INTRODUCCIÓN
Los radicales libres se pueden liberar durante el metabolismo humano, y además se producen por diversos contaminantes ambientales, como por ejemplo los atmosféricos, acuáticos, de suelos, radiaciones como las ultravioleta y gamma, entre otros. Podemos incluir el metabolismo de algunos químicos y el elevado estrés físico o psíquico que pueda tener un individuo1. Según lo estipulado por Núñez (2011), se han podido estudiar alrededor de 100 enfermedades y su relación con el desbalance del sistema oxidativo, entre otras tenemos: enfermedades cardiovasculares, gástricas, respiratorias, neurológicas, del sistema endocrino y cáncer, las cuales se pueden prevenir o ser reducidas con los compuestos antioxidantes presentes en algunos alimentos2. En el mundo existen diversos estudios que evalúan la capacidad antioxidante del camote en distintas variedades, debido a que presenta componentes fenólicos que le puedan brindan estas propiedades3,4,5. El camote es un alimento que no tiene un consumo habitual, uno de los motivos podría ser el desconocimiento de los beneficios de este importante alimento que pueda tener para la salud y la falta de difusión de la amplia variedad de camotes con la que cuenta el Perú, existiendo entre 250 a 300 variedades6. Se determinó el efecto antioxidante de este camote por dos métodos: Poder antioxidante del ion férrico (FRAP) y 2,2-Difenil -1-picrilhidrazilo (DPPH), teniendo en cuenta que los tratamientos de secado afectan la presencia de los componentes y de la capacidad antioxidante presente en la muestra, lo cual ha sido reportado en varios estudios7,8,9.
El objetivo de la presente investigación es determinar la actividad antioxidante en el polvo liofilizado y atomizado de Ipomoea batata L. (camote morado) por los métodos DPPH y FRAP.
PARTE EXPERIMENTAL
Recolección y certificación taxonómica de la muestra para el estudio
La recolección del Ipomoea batata L., camote morado, se realizó en la Región Piura, Provincia de Piura, Distrito de Catacaos, Centro Poblado la Unión, Anexo Chalaco. Esta se encuentra a una altitud de 60
m.s.n.m. Se recolectó un promedio de 20 kg de muestra, a la cual se le realizó la clasificación botánica de la especie por un consultor botánico inscrito en el registro de profesionales que realizan la identificación taxonómica de especímenes y productos de la flora RD N°0311- 2013-MINAGRI.
Secado por liofilizado
Las raíces de la Ipomoea batata L., camote morado, fueron lavadas con abundante agua, para eliminar impurezas y tener una muestra homogénea. Luego de ello se procedió a pesar las raíces, para después cortarlas en láminas delgadas y colocarlas en las bandejas del equipo liofizador. El proceso de liofilizado se realizó por 12 horas a una temperatura de -18 ºC en un equipo STELLAR® Laboratory Freeze Dryer | Millrock Technology, Inc. Las láminas del liofilizado de Ipomoea batata L., camote morado, fueron trituradas hasta pulverizarlo con ayuda de un mortero y luego almacenado en bolsa de aluminio a temperatura controlada entre 15 a 20 ºC. Siendo su humedad relativa entre 7 a 15 %.
Secado por atomizado
Las raíces de Ipomoea batata L., camote morado, se lavaron con abundante agua, para eliminar y tener una muestra homogénea. Luego se procedió a triturar y tamizar por malla N° 20. Después se llevó a atomizar teniendo en cuenta la siguiente proporción 90 % de pulpa de raíz Ipomoea batata L., camote morado y 10 % de maltodextrina (Maltogill 20, Dextrose Equivalent-DE 20). Se realizó el secado a través del equipo A/S NIRO NF ATOMIZER® spray-drying, hecho en Dinamarca con los siguientes parámetros de proceso. Temperatura de ingreso: 160 a 180 ºC, temperatura de salida: 85 a 95 ºC a una velocidad de un litro por hora. El polvo atomizado fue almacenado en bolsa de alupol de 5 gramos, a temperatura controlada entre 15 a 20 ºC, bajo humedad relativa < a 17 % para su posterior procesamiento y análisis.
Prueba de solubilidad
En tres tubos de ensayo se colocó una cantidad de muestra (10 mg), liofilizado y atomizado de la raíz de Ipomoea batata L. (camote morado) y se agregó a cada uno de los tubos de ensayo 1mL del solvente de diferente polaridad. Luego se agitó con la ayuda de una bagueta y se observó los resultados. Los solventes utilizados fueron agua (H2O), etanol (EtOH) y metanol (MeOH).
Actividad de captación de radicales DPPH
La actividad antioxidante se determinó mediante el efecto de eliminación de radicales libres DPPH utilizando el reactivo de Trolox como control positivo, según el método (Nwaehujor et al., 2014). La curva de calibrado de Trolox se preparó en un rango de concentraciones (50-1000 μmol). Se añadieron 290 µl de solución de DPPH metanólico (1 x 105 M) y la mezcla se incubó durante una hora a temperatura ambiente a leve agitación y protegido de la luz. La absorbancia se leyó a 517 nm y los datos se adquirieron y procesaron utilizando el software Gen5TM de BioTek (BioTek Instruments Inc.). La actividad de captación de radicales libres se determinó de acuerdo con la ecuación de % de Actividad Antioxidante (AA) = 100 - [{(Absorbancia de la muestra- Absorbancia del blanco) × 100} / Absorbancia control] publicada anteriormente12.
Ensayo de potencia férrica antioxidante reductor FRAP
Se determinó el potencial antioxidante total de una muestra utilizando el método de poder antioxidante reductor férrico (FRAP) de Benzie y Strain (1996). Este método se basa en reducir el poder de un compuesto antioxidante. Un potencial antioxidante reducirá al ion férrico (Fe3+) al ion ferroso (Fe 2+) a bajo pH; las últimas formas un complejo azul (Fe 2+ / TPTZ), medido a 593 nm. El reactivo FRAP se preparó recientemente, mezclando tampón de acetato 0,3 M (pH 3,6), TPTZ 10 mM en HCl 40 mM y FeCl3 20 mM en una proporción 10:1:1 (v/v/v), respectivamente. Los estándares de Trolox se prepararon en un rango de 50 μM a 1000 μM en una mezcla de H2O/ etanol (75:25). El ensayo se llevó a cabo mediante la adición de 10 μl de muestra/ estándares y blanco en una microplaca de 96 pocillos y luego se agregó 290 μl de reactivo FRAP. Después de 15 min de incubación a 37ºC y agitación, se leyó la absorbancia a 593 nm. Todas las muestras se realizaron por triplicado. Los resultados fueron comparados con una curva estándar preparada diariamente con diferentes concentraciones de Trolox y se expresaron los resultados como μmol de equivalentes de Trolox (TE)12.
RESULTADOS Y DISCUSIÓN
En la prueba de solubilidad se determinó si es miscible al producirse una mezcla homogénea entre el polvo liofilizado y atomizado de la raíz de Ipomoea batata L., camote morado y el solvente asignado, encontrándose los siguientes resultados según tabla 1.
Reactivos | Resultados | |
10mg de muestra en 1 mL. de solvente | ||
Liofilizado en agua (H2 O) | Miscible | |
Liofilizado en etanol (EtOH) | Miscible | |
Liofilizado en metanol (MeOH) | Miscible | |
Atomizado en agua (H2 O) | Miscible | |
Atomizado en etanol (EtOH) | Miscible | |
Atomizado en metanol (MeOH) | No Miscible |
En la tabla 2 se muestran los resultados del ensayo DPPH, se evalúa la actividad antioxidante para neutralizar un radical y son expresados en µM Trolox equivalente/g. Cada muestra fue analizada por duplicado en grupos de camote morado atomizado y liofilizado.
Grupo | N | Media µM Trolox/g | Desv. Estándar | Desv. Error | 95% IC | Mínimo | Máximo | |
Límite inferior | Límite superior | |||||||
Patrón | 4 | 0,0000 | 0,0000 | 0,0000 | 0,0000 | 0,0000 | 0,0000 | 0,0000 |
Atomizado | 4 | 52,407 | 21,591 | 10,796 | 18,051 | 250,996 | 25,474 | 74,394 |
Liofilizado | 4 | 232,251 | 11,780 | 0,5890 | 213,506 | 223,816 | 222,178 | 245,318 |
Total | 12 |
En la tabla 3 se muestra los resultados del ensayo FRAP un complejo de color amarillo que es el Fe3+-TPTZ (2,4,6-tripiridil-s-triazina), que es reducido al complejo azul de Fe2+-TPTZ por un electrón donador. Se realizó la curva estándar con el patrón Trolox. Cada muestra fue medida por duplicado en grupos de camote atomizado y camote liofilizado. Los resultados descriptivos se reportan en unidades µM Trolox/g.
Grupo | N | Media µM Trolox/g | Desv. Estándar | Desv. Error | 95% IC | Mínimo | Máximo | |
Límite inferior | Límite superior | |||||||
Patrón | 4 | 0,0000 | 0,0000 | 0,0000 | 0,0000 | 0,0000 | 0,0000 | 0,0000 |
Atomizado | 4 | 49,575 | 0,2351 | 0,1175 | 45,834 | 53,316 | 46,365 | 216,753 |
Liofilizado | 4 | 201,814 | 13,162 | 0,6581 | 180,869 | 222,758 | 189,487 | 216,753 |
Total | 12 |
En la prueba de solubilidad del extracto atomizado y liofilizado de la Ipomea batata L., camote morado. Los resultados fueron: en agua y etanol son miscibles, en metanol no son miscibles, según se demuestra en la tabla 1. Observando resultados similares en Saucedo JC. (2016), quien investigó en las pruebas de ensayo de solubilidad en “Obtención de antioxidantes en polvo a partir de la Ipomea batata L. (camote morado)”. Se demostró que la mayor solubilidad en solventes polares fue agua y etanol. Lo que nos indicaría la presencia mayoritaria de compuestos fenólicos de alta polaridad por lo que se puede inferir que los componentes químicos son de estructura y naturaleza polar, los cuales fueron corroborados previamente por Saucedo JC. (2016).
Según los resultados de la actividad antioxidante por el método DPPH se obtuvo 23,23 μM Trolox/g en el camote morado liofilizado y 5,24 μM Trolox/g en el obtenido por atomizado, en comparación con el autor Cervantes R. (2019), que obtuvo por el método de DPPH valores de 25,16 µmol Trolox/g en hojas de camote morado. De acuerdo a estos resultados el Ipomoea batata L., camote morado, Cervantes R. (2019) tuvo resultados con mayor contenido de capacidad antioxidante en comparación al presente trabajo.
Al respecto de los resultados obtenidos en el presente trabajo respecto a la actividad antioxidante por el método FRAP, se presentan los resultados de 4,96 y 20,18 (μM Trolox/g) en el camote morado atomizado y liofilizado, respectivamente y según el autor Cervantes R. (2019) utilizando el método de capacidad antioxidante equivalente a Trolox con el ácido 2,2’-azino-bis-3-etilbenzotiazolina-6-sulfónico, obtuvo 8,61 µmol Trolox/mL. Según estos resultados el Ipomoea batata L., camote morado presenta mayor contenido de capacidad antioxidantes en el presente estudio frente al autor Cervantes R. (2019).
En referencia a los resultados de capacidad antioxidante obtenido por el método de DPPH 5,2407 μM Trolox/g y 4,9575 μM Trolox/g por el método FRAP en la muestra deshidratada por atomización, no se puede observar una diferencia considerable aun teniendo diferentes técnicas de análisis. Esto se corresponde con los resultados obtenidos en las muestras deshidratadas por liofilización: 23,2251 μM Trolox/g analizada por el método de DPPH y 20,1814 μM Trolox/g por el método de FRAP que también reflejan resultados semejantes.
Los resultados de capacidad antioxidante por ambos métodos DPPH y FRAP, utilizados en el presente trabajo, muestran una gran variación debido al tipo de deshidratación al cual se sometió la muestra de Ipomoea batata L., camote morado. Esto demuestra que el proceso para estabilizar la muestra afecta de manera considerable y es que la elevada temperatura podría afectar sus componentes, lo que no ocurre con el proceso de liofilizado que utiliza la deshidrocongelación, de esta forma congelando y reduciendo la presión, reflejando la diferencia en los mejores resultados de la capacidad antioxidante
CONCLUSIONES
Se puede concluir que la muestra de camote morado liofilizada presentó mayor contenido de capacidad antioxidante en cuanto a la muestra atomizada que presenta valores más bajos, por lo cual es importante resaltar que el proceso de deshidratación afecta en gran medida los resultados obtenidos.
Comparando los métodos de DPPH y FRAP para los diferentes procesos de deshidratación de la muestra de Ipomoea Batata L., camote morado, se pudo observar que los resultados se corresponden reflejando que ambos métodos de análisis tienen resultados semejantes utilizando muestras deshidratadas por el mismo proceso.