RESUMEN

Saccharomyces boulardii es una levadura natural no modificada geneticamente aislada de la corteza del arbol del litchi en Indochina. En su forma liofilizada es un ejemplo de lo que se denomina "medicamento probiotico". Su denominación de probiotico esta en relación a que se activa en el tracto gastrointestinal en interrelación a este medio; y se etiqueta como medicamento porque la forma liofilizada tiene un expediente farmacéutico y clínico que incluyen en la regulación de producto medicinal en casi 100 países.

PALABRAS CLAVES: Saccharomyces boulardii, probiotico.

SUMMARY

Saccharomyces boulardii is a natural yeast without genetic modification isolated from the bark of the litchi tree in Indochina. In its lyophilized form is an example of the called "probiotic medicine". The probiotic denomination is in relation to that itself assets in the gastrointestinal tract in interrelation to that biologic enviroment. And is labelled as medicine because the lyophilized form has a clinical and pharmaceutical expedient included in the regulation of medicinal products in almost 100 countries. 

KEY WORDS: Saccharomycer boulardii, probiotic.

INTRODUCCIÓN

Saccharomyces boulardii es una levadura natural no modificada genéticamente que es aislada de la corteza del árbol del litchi en Indochina. Esta levadura muestra un crecimiento óptimo a una temperatura inusualmente alta de aproximadamente 37°C y, por ello, se le considera como una "levadura de temperatura extremadamente alta".

Aunque Saccharomyces boulardii es similar a Saccharomyces cerevisiae, existen algunas diferencias relativas a sus características taxonómicas, metabólicas y genéticas. [1,2]

En la forma liofilizada, Saccharomyces boulardii es la sustancia activa de un producto medicinal comercializado en casi 100 países de todo el mundo, con diferentes nombres de marca, presentaciones y concentraciones de dosis; generalmente se presentan en cápsulas de 50 mg.

Saccharomyces boulardii liofilizada es un ejemplo de lo que se conoce como "medicamento probiótico":

• "Probiótico" porque Saccharomyces boulardii liofilizada se reactiva en el tracto gastrointestinal después de su administración oral y tiene un "impacto positivo en la salud y fisiología del huésped". [3,4] Algunas veces el término "agente bioterapéutico" es preferible frente al término""probiótico" para designar a aquellos microorganismos probióticos que "previenen o tratan enfermedades humanas". [5,6]

• "Medicamento" porque la fórmula liofilizada se prepara, empaqueta y pone a prueba tal como se hace con un medicamento y porque el expediente farmacéutico y clínico de Saccharomyces boulardii liofilizada ha sido elaborado de conformidad con las regulaciones de comercialización de productos medicinales de los países donde el producto está a disposición del público.

Por lo tanto, Saccharomyces boulardii liofilizada es un medicamento probiótico que se diferencia claramente de los alimentos probióticos que contienen varias cepas de microorganismos que se administran a animales para mejorar la producción zootécnica o a seres humanos sanos (generalmente en la forma de yogures o productos lácteos) para fortalecer la fisiología del huésped, cuando no existe enfermedad alguna.

FORMA Y FARMACOCINÉTICA

Saccharomyces boulardii liofilizada se obtiene a través del secado por congelación en presencia de lactosa. Este método permite que la levadura se mantenga viva y estable. Un estudio de las propiedades farmacodinámicas de Saccharomyces boulardii demostró que, en la mayoría de casos, dichas propiedades están asociadas a su capacidad de reactivación. Al igual que todas las levaduras, Saccharomyces boulardii es genéticamente resistente a los antibióticos antimicrobianos; para casi todos los antibióticos estudiados, el MIC de Saccharomyces boulardii siempre es muy alto > 128 mg/l. [7]

Saccharomyces boulardii es resistente a la acidez gástrica y a la proteinólisis y puede almacenarse rápidamente en grandes cantidades en el tracto gastrointestinal, manteniendo niveles constantes en forma viable. [6]

En los animales agénicos (estériles), la levadura Saccharomyces boulardii, administrada en una sola dosis, se aloja y permanece en el tracto gastrointestinal, pero en concentraciones menores (5 x 10⁷ células/g heces) a las que se albergan en los microorganismos naturales de la flora intestinal dominante (109 - 1010), lo que demuestra la capacidad de esta levadura para adaptarse a las condiciones fisicoquímicas del medio intestinal. Por otro lado, en los animales hologénicos (con flora bacteriana normal), la levadura Saccharomyces boulardii se elimina rápidamente en unos cuantos días. Esto significa que cuando la flora es normal, Saccharomyces boulardii no se instala en el tracto gastrointestinal [8] . Un análisis de la cinética de eliminación de las heces de células vivas de Saccharomyces boulardii durante la administración regular de este producto en forma liofilizada (±4 x 10¹⁰ células viables de Saccharomyces boulardii) en voluntarios adultos saludables [9] reveló que al tercer día de administración se alcanzó una condición estable de aproximadamente 108 células/día. Saccharomyces boulardii desaparece de los excrementos dos o cinco días después de interrumpir la terapia. La tasa de recuperación de células vivas a partir de las heces se estimó en 0,2 % - 0,4 % en ratas [10] y en los seres humanos [11] con una relación lineal dosis/recuperación. Este coeficiente se multiplica cuando los sujetos reciben simultáneamente un antibiótico activo contra la flora anaeróbica dominante del colon (ampicilina). [11] Un estudio clínico realizado en pacientes que han sufrido infecciones recurrentes causadas por Clostridium difficile y que han sido tratados con una dosis diaria de 1 g de Saccharomyces boulardii reveló que la concentración de células viables de levadura en las heces de los pacientes que no presentaron recaídas posteriores fue, en promedio, más alta (1 x 10⁶ células/g) que la observada en pacientes que sufrieron una recaída (2,5 x 10⁴/g, P = 0,02). Por lo tanto, existe una relación causal importante entre el nivel de concentración de Saccharomyces boulardii en las heces y la actividad terapéutica del fármaco. [12]

PROPIEDADES FARMACODINÁMICAS

A medida que recorre el tracto gastrointestinal, la levadura Saccharomyces boulardii genera efectos farmacodinámicos semejantes a los efectos fisiológicos de la flora intestinal normalmente equilibrada.

Efectos de Saccharomyces boulardii en las infecciones intestinales experimentales

Se han evaluado los efectos de la administración oral de Saccharomyces boulardii en varios patrones de infección y/o colonización gastrointestinal por diferentes microorganismos.

Clostridium difficile

La administración de Saccharomyces boulardii reduce significativamente la mortalidad a causa de colitis provocada por Clostridium difficile en hámsteres tratados con clindamicina [13] y ratones inoculados oralmente ya sea con Clostridium difficile [14] o directamente con toxinas A y B producidas por esta bacteria. [15]

A través de un microscopio óptico [16] o electrónico, [17, 18] se ha podido verificar la ausencia de lesiones en la mucosa intestinal y colónica en animales protegidos con Saccharomyces boulardii. Esto también se ha podido confirmar en un modelo in vitro de la línea celular del epitelio intestinal de una rata (lRD-98). [19] El efecto protector de Saccharomyces boulardii contra la Clostridium difficile productora de enterotoxinas es más eficaz cuando el tratamiento es preventivo y se administran dosis continuas. [13, 14, 20] El efecto desaparece cuando las células de la levadura son aniquiladas por la anfotericina B o a través de la hipertermia, y depende linealmente de la dosis administrada y la viabilidad de Saccharomyces boulardii [20] . El efecto protector está, a veces, relacionado con la disminución de las concentraciones de Clostridium difficile [21] en el intestino y siempre ligado a la reducción de los títulos de la toxina A o B. [14, 17, 20, 21] Adicionalmente, Elmer y Corthier señalaron una correlación importante entre la tasa de supervivencia de ratones infectados con Clostridium difficile y la administración de una dosis oral de Saccharomyces boulardii. Si se incrementa la dosis de Saccharomyces boulardii de 3 x 10⁸ a 3,3 X 10¹⁰ células/ml en el agua de bebida de los ratones infectados con Clostridium difficile, se producirá un incremento lineal de la tasa de supervivencia de 0 % a 85 %. [20]

Efecto protector de Saccharomyces boulardii contra la infección intestinal causada por Clostridium difficile, incluyendo los resultados de los efectos complementarios de varios mecanismos:

• La levadura produjo una secreción in vivo de una proteasa de 54 kDa, inhibiendo de este modo los efectos enterotóxicos y citotóxicos de las toxinas A y B de Clostridium difficile. El receptor intestinal para la toxina A producido por Clostridium difficile es una glicoproteína de alto peso molecular sensible a las proteasas. Pothoulakis et al. [23,24] demostraron que Saccharomyces boulardii in vivo produce una proteasa con un peso molecular de 54 kDa, que disminuyó las secreciones de líquidos y electrolitos en un modelo aislado con asas intestinales de un conejo, pero no tuvo ningún efecto en las lesiones celulares provocadas por Clostridium difficile en otras líneas celulares que no fueran las del intestino, tales como los fibroblastos pulmonares humanos (IMR-90) o la línea celular de la leucemia basófila en ratas. La proteasa de Saccharomyces boulardii impidió la unión de la enterotoxina A purificada [H3] a las membranas microvellosas intestinales en 37%, redujo en 55% las secreciones de líquidos y electrolitos provocadas por la enterotoxina A en las ratas y disminuyó la permeabilidad intestinal al manitol en 93%. Adicionalmente, después de haber administrado Saccharomyces boulardii oralmente a las ratas por tres días, la administración oral de la enterotoxina A ya no generó secreciones intestinales ni permeabilidad. Castagliuolo et al. [24, 25] confirmaron que la proteasa parcialmente purificada puede proteolizar directamente y específicamente la toxina A y destruir, por lo menos parcialmente, el área del receptor en la membrana microvellosa intestinal, inhibiendo la fijación de las toxinas A y B a los receptores.

• Estimulación de la respuesta inmune a la antitoxina A: en el ratón inoculado oralmente con un toxoide de la toxina A, la administración de Saccharomyces boulardii permitió amplificar significativamente la respuesta inmune específica medida a través de la concentración sérica de la antitoxina A de anticuerpos secretores IgA e IgM. [26]

• Finalmente, se demostró in vitro, en un modelo celular, la capacidad de Saccharomyces boulardii para inhibir la adherencia de Clostridium difficile a las células intestinales. [27]

Vibrio cholerae

En un modelo in vivo de un asa de yeyuno de rata ligada, la administración de Saccharomyces boulardii redujo significativamente la hipersecreción de sales y líquidos provocada por la inoculación previa con la toxina del cólera. [28]

Este efecto inhibidor también se confirmó in vitro en los modelos de células epiteliales del intestino en ratas: IRD 98, IEC 17 [29] y IEC 6. [30] El efecto de Saccharomyces boulardii está asociado a la disminución en 50% de la producción de AMPc inducida por la toxina del cólera. Este efecto desaparece cuando la levadura es destruida por esterilización en autoclave. El sobrenadante del cultivo de Saccharomyces boulardii (conocido como medio condicionado o CM) puede, por sí mismo, disminuir los niveles de AMPc inducidos por la toxina del cólera en las células IEC 6, si es administrado en dosis. Este efecto desaparece cuando el medio se desnaturaliza debido al calor, se hidroliza mediante la tripsina o es tratado con ácido tricloroacético, lo que sugiere la presencia de un factor de proteína, el cual ha sido identificado como una proteína de 120 kDa [30] a través de una autorradiografía posterior a la separación de proteínas en gel de poliacrilamida y elusión. Adicionalmente, el CM no altera los parámetros para fijar la toxina yodada del cólera a su receptor [29] y no tiene ninguna actividad proteolítica contra la toxina del cólera. [30] Estas observaciones han conducido a Czerucka et al. [31] a estudiar el efecto del CM de Saccharomyces boulardii en las vías de señalización intracelular que pueden regular la secreción de cloruro.

Se ha estudiado el efecto del CM en el transporte de cloruro en la línea celular T84 establecida a partir de un carcinoma humano. Esta línea celular presenta las características de las células crípticas que segregan cloruro a través de la bomba Na+, K+ ATPasa, el co-transportador Na+/K+/Cl, el canal K+ localizado en el lado basolateral y el canal Cl- ubicado en el lado apical. Todos los intercambiadores participan en la secreción de cloruro provocada por agonistas que actúan a través del AMPc, como por ejemplo, la forskolina, el polipéptido intestinal vasoactivo (VIP) y las prostaglandinas (PGE), o a través de Ca2+, como el carbacol. [32] Se ha utilizado el método de Venglarik et al. [33] para cuantificar la secreción de cloruro inducida por la exposición a la toxina del cólera durante 60 minutos.

Con el CM de Saccharomyces boulardii, la secreción de cloruro y los niveles de AMPc estimulados por la toxina del cólera en células T84 se redujeron a niveles controlables. Adicionalmente, la secreción de cloruro inducida por el VIP o la PGE2 disminuyó sólo cuando las células estuvieron expuestas por 60 minutos al CM de Saccharomyces boulardii antes de la incubación en presencia de estos agonistas. Este proceso está correlacionado con la disminución de los niveles de AMPc. [31]

También es necesaria una hora de incubación en presencia del CM de Saccharomyces boulardii a fin de disminuir la secreción de cloruro provocada por el carbacol, pero sin disminuir los niveles intracelulares de inositol-trifosfatasa. De este modo, el CM de Saccharomyces boulardii parece generar un mediador celular en las células T84 capaz de disociar los canales de iones del Ca2+ intracelular.

En resumen, estos estudios demuestran que Saccharomyces boulardii segrega un péptido de 120 kDa que ejerce una acción directa sobre los enterocitos y genera vías de señalización en la célula implicada en el control de la secreción.

Escherichia coli

En el modelo de diarrea inducida por la bacteria Escherichia coli (ETEC) productora de enterotoxinas termoestables en ratones jóvenes, la administración concomitante de una suspensión de Saccharomyces boulardii produjo un efecto inhibidor importante en la hipersecreción intestinal. [34]

La Escherichia coli enteropatógena (EPEC) es un agente bacteriano dominante, responsable de la diarrea infantil, especialmente en los países en desarrollo.

La Escherichia coli enterohemorrágica (EHEC) es responsable de infecciones transmitidas por los alimentos en los países industrializados (Estados Unidos, Canadá, Japón) y provoca colitis hemorrágicas que pueden estar asociadas a un síndrome hemolítico y urémico. [35] Estas bacterias sintetizan una "toxina tipo Shiga" que inhibe la síntesis de proteínas en las células intestinales, pero que al parecer no provoca enfermedades intestinales relacionadas con la EHEC. La etopatogenesis de la EPEC y EHEC se inicia con la adherencia de éstas a la mucosa intestinal, lo que causa cambios morfológicos en las células huésped como la destrucción de la microvellosidad y la formación de lesiones denominadas "lesiones de unión/borramiento" con la acumulación de fibras de actina que forman un "pedestal" bajo la zona de unión bacteriana. [35] Una de las consecuencias de dichos cambios es la ruptura de las uniones estrechas, lo que ocasiona la desaparición de la función de barrera del enterocito. [36] Dichas infecciones están asociadas a la transmigración de células polimorfonucleares y a la síntesis de citocinas proinflamatorias (JL-8). [37] Algunas de las respuestas de las células a la infección están correlacionadas con la activación de las proteínas celulares por fosforilación. Por ende, se ha determinado que la fosforilación de la cadena ligera de miosina (MLC) tiene una implicancia directa en la ruptura de las uniones estrechas que se produce cuando hay una infección con EPEC. [38]

La administración de Saccharomyces boulardii durante la infección de las células T84 por la bacteria EPEC, que produce la "toxina tipo Shiga" (cepa EDL 931), permite restaurar la función de barrera (medida por la resistencia transepitelial, el paso de inulina o la inmunolocalización de la proteína ZÛ-l). Adicionalmente, un estudio de segmentación de la caspasa 32 demostró que la levadura puede retardar el proceso de apoptosis o muerte celular programada causada por la infección de las células T84 por EPEC. La levadura no tiene ningún efecto en el número de bacterias de EPEC o EHEC que se adhieren a los enterocitos. Por el contrario, la levadura inhibe la fosforilación de algunas proteínas que normalmente se fosforilan por causa de la infección [39, 40] .

Así, las células T84 infectadas con EPEC o EHEC activan las tres vías de las MAP quinasas (proteína activadora mitógena): la proteína quinasa 1 y 2 reguladora extracelular (ERK-1 y ERK-2), la MAP quinasa p38 y la JUN-quinasa. La activación de estas quinasas no parece estar relacionada con el proceso de "unión/borramiento", ni con los cambios en las uniones intracelulares estrechas. [41, 42]

Por otro lado, la activación de ERK 1/2 está relacionada directamente con la internalización de la bacteria. La presencia de Saccharomyces boulardii reduce el número de bacterias internalizadas y también modula el grado de fosforilación de ERK-1 y 2 [41] . En condiciones fisiológicas normales, la activación de ERK-1 y 2 por desfosforilación interviene en el proceso de crecimiento y diferenciación celular en respuesta a factores tróficos como la insulina, l'IgF-1.

La desfosforilación de la vía MAP quinasa p38 está involucrada en el proceso de apoptosis. Durante una infección causada por bacterias invasivas como la Salmonella typhimurium [43] y la Listeria monocytogenes [44] , las vías de señalización intracelular de las MAP quinasas intervinieron en el proceso invasivo y en la síntesis de las citocinas. Czerucka et al. [41, 42] demostraron que la vía de la MAP-quinasa estimulada durante la infección por EPEC y EHEC, así como la vía NF-ºB inducida por EHEC, están involucradas en la síntesis de la IL-8. Saccharomyces boulardii inhibe estas vías así como la síntesis de la IL-8 durante el proceso de infección [40] . Adicionalmente, Saccharomyces boulardii impide la apoptosis provocada por EHEC y reduce la síntesis de TNF±.

Otras bacterias enteropatógenas

La administración de una sola dosis de 10 mg de Saccharomyces boulardii en ratones gnotoxénicos inoculados oralmente con una suspensión de Shigella flexneri o Salmonella typhimurium produce un efecto protector en términos de mortalidad (Shigella flexneri) o de severidad de las lesiones intestinales (Salmonella typhi murium) provocadas por estos agentes enteropatógenos. [45] Este efecto protector no reduce el grado ni la velocidad de multiplicación de estas bacterias en el intestino.

EFECTOS DE SACCHAROMYCES BOULARDII EN EL TRACTO INTESTINAL

Efectos tróficos

La administración oral de Saccharomyces boulardii durante una semana en voluntarios adultos saludables no produjo ningún efecto en la morfología intestinal (histología convencional), ni en la altura de los vellos intestinales ni la profundidad de las criptas. De modo similar, el análisis con microscopio de electrones de las células epiteliales del intestino de ratas tratadas con Saccharomyces boulardii no mostró ninguna translocación intracelular en la levadura ni alteración morfológica de los microvellos, los vellos ni las criptas. [46] En base a un método tridimensional de microdensificación de biopsias humanas, Jahn et al. [47] confirmó que, después del tratamiento oral con Saccharomyces boulardii, no se observó ninguna diferencia significativa en el área superficial de los vellos ni en la profundidad de las criptas. En un estudio realizado en humanos y ratas, Buts et al. [46] demostraron que, en comparación con las biopsias iniciales, las biopsias de voluntarios humanos mostraron un incremento significativo en la actividad total específica de la sacarosa-isomaltasa (+ 82 %), la lactasa (+ 77 %) y la maltasa (+ 75 %) después de una semana de tratamiento. De igual manera, en ratas de 30 días de vida destetadas y tratadas durante dos semanas con Saccharomyces boulardii, la actividad total y específica de la sacarosa-isomaltasa, la maltasa y la lactasa fue significativamente mayor con respecto a la de las ratas del grupo control tratado con placebo.

En un estudio realizado con voluntarios adultos sanos, Jahn et al. [47] utilizaron un método in situ para medir la actividad de las enzimas microvellosas en secciones congeladas de muestras de biopsia intestinal. Después del tratamiento con Saccharomyces boulardii, estos autores observaron un incremento importante de la lactasa, las ±-glucosidasas y la fosfatasa alcalina de + 22 % a + 55 % con respecto a las actividades de línea base medidas antes del tratamiento. De estos estudios, se infiere que, en los hombres y las ratas, Saccharomyces boulardii estimula la expresión de las disacaridasas y la fosfatasa alkalina, enzimas que participan en la digestión de nutrientes y que generalmente se alteran cuando se producen desórdenes intestinales agudos y crónicos. Saccharomyces boulardii segrega una sacarasa en el medio endoluminal, a niveles que permiten tratar eficazmente la deficiencia congénita de sacarasa-isomaltasa. [48] Un estudio reciente [49] demostró que Saccharomyces boulardii también libera una leucina aminopeptidasa hacia el medio endoluminal, que pertenece al grupo de zinc-metaloproteasa, la cual refuerza la proteólisis de pequeños péptidos aminoterminales. Este mecanismo puede reducir la alergenicidad a las proteínas dietarias, especialmente después de una gastroenteritis aguda. Finalmente, un estudio [50] demostró que la administración oral de Saccharomyces boulardii en ratas, durante una semana, tras una enterectomía proximal extendida al 60 %, no sólo indujo la actividad de las disacaridasas, sino también la absorción de la D-glucosa y Na+ a través del transporte de glucosa/Na+. Se ha medido el nivel de absorción de la D-glucosa en las preparaciones vesiculares de borde en cepillo, teniendo en cuenta el tiempo de intubación y concentración de glucosa en el medio de incubación de las ratas control resectadas pero que no recibieron tratamiento y las ratas control transectadas. Se estimuló la expresión de 70 kDa SGLT-1 en el borde en cepillo del cotransportador-1 de sodio-glucosa, medido por autorradiografía, en las ratas transectadas tratadas con Saccharomyces boulardii. Estos resultados son compatibles con los que Zaouche et al obtuvieron posteriormente. [51]

Saccharomyces boulardii estimula la producción de glicoproteínas en el borde en cepillo de los microvellos, como las hidrolasas, los transportadores, las IgA secretoras [26, 52] y los receptores de inmunoglobulinas poliméricas [52] cuyas funciones fisiológicas y síntesis intracelular son marcadamente diferentes. Recientemente, se ha evaluado el mecanismo de esta estimulación. Debido a que Saccharomyces boulardii no penetra en los enterocitos, [46] hemos evaluado el impacto potencial de los efectos tróficos generados por Saccharomyces boulardii durante su recorrido endoluminal.

La determinación de HPLC en la levadura liofilizada reveló concentraciones significativas de poliaminas consistentes en 679 nanomoles/100 mg de preparación liofilizada, especialmente espermidina (55 %) y espermina (43 %), con cantidades insignificantes de putrescina (1,4 %). [53]

Teóricamente, los aportes de poliaminas pueden influir en la expresión intestinal de las glicoproteínas en el borde en cepillo (hidrolasas, proteasas, moléculas de transporte, etc.). De hecho, se ha observado una mayor estimulación de la actividad de las disacaridasas, aminopeptidasas y la secreción endoluminal de la IgA secretora en el intestino delgado de las ratas jóvenes no destetadas debido a la ingestión oral de espermina y espermidina equivalente a 1000 nanomoles por día de poliaminas purificadas. Cuando se trató a las ratas jóvenes con una dosis de espermina (500 nanomoles/día) equivalente al contenido de poliamina de la levadura liofilizada (679 nanomoles/100 mg), se observaron respuestas enzimáticas similares, tales como el incremento significativo de la actividad específica total de sacarasa (x 2,5) y la maltasa (+ 24 %). Como respuesta a los 1000 nanomoles de espermina, la estimulación de las actividades enzimáticas fue proporcionalmente más alta, con un incremento de 4,6 x actividad de sacarasa y un incremento de 70 % en la actividad de la maltasa. De modo similar, las ratas destetadas tratadas ya sea con Saccharomyces boulardii o con dosis equivalentes de espermina (500 nanomoles) presentaron incrementos paralelos significativos en la actividad específica de la sacarasa (+ 157 %) y la maltasa (+ 47,5 %).

De este modo, la administración oral de 100 mg de Saccharomyces boulardii liofilizada con un contenido de 679 nanomoles de poliaminas y otra con un contenido de 500 nanomoles de espermina purificada en ratas jóvenes amamantadas o destetadas generó cambios similares en la microvellosidad. La estimulación de la sacarasa y la maltasa a través de la administración oral de espermina es un proceso dosis dependiente. Es más susceptible en este caso en comparación con otras enzimas microvellosas (lactasa, aminopeptidasa) y se vuelve detectable con dosis de espermina de más de 250 nanomoles al día. Adicionalmente, tanto Saccharomyces boulardii [53] como la espermina purificada (500 nanomoles al día) pueden estimular significativamente la producción intestinal del receptor de inmunoglobulinas poliméricas en las ratas destetadas entre 20 y 40 días post parto.

Paralelamente a los cambios en las actividades enzimáticas, el tratamiento oral con Saccharomyces boulardii produjo cambios concomitantes en las concentraciones de poliamina tanto en la mucosa intestinal (+ 21,4 %) como en el líquido endoluminal (+ 48 % a + 316 % en el yeyuno y + 60,8 % a + 150 % en el íleon). Las variaciones en las concentraciones de las tres poliaminas medidas en la mucosa intestinal (putrescina: + 7 %, espermidina: + 21,9 %, espermina: + 21,4 %) fueron proporcionales a las concentraciones medidas en la preparación de la levadura liofilizada. De hecho, la espermina y espermidina, que representan 44 % y 55 % de la cantidad total de poliaminas liberadas por Saccharomyces boulardii, se incrementaron en proporciones similares en la mucosa intestinal (+ 21,4 % y + 21,9 %).

Debido a los bajos niveles de putrescina segregados por la levadura (1,4 %), las concentraciones de putrescina en la mucosa variaron ligeramente y no resultaron afectadas por el tratamiento.

Los datos experimentales indican que el transporte transepitelial de poliaminas por las vesículas dentro del borde en cepillo de los microvellos es un proceso seleccionado y saturable, que depende, en gran medida, de sus concentraciones endoluminales. En las muestras de líquido de yeyuno e íleon obtenidas al enjuagar el lumen, seguido de un proceso de filtración para expandir las células de la levadura, los niveles de espermidina y espermina se incrementaron de 48 % a 316 % en las ratas tratadas con Saccharomyces boulardii en comparación con los controles, mientras que los niveles de putrescina no cambiaron significativamente. Debido a que las poliaminas endoluminales (especialmente, la putrescina) provienen de varias fuentes, por ejemplo, algunos alimentos (quesos), secreciones intestinales, células descamantes y el metabolismo de la flora bacteriana, los cambios en la concentración son mucho más significativos en el medio endoluminal que en la mucosa intestinal.

En resumen, los datos arriba mencionados indican que con las dosis utilizadas, la preparación liofilizada de Saccharomyces boulardii produjo efectos tróficos en la mucosa intestinal, que probablemente son mediados por la liberación endoluminal de espermina y espermidina. Estas sustancias policatiónicas pueden ser liberadas por las levaduras durante su catabolismo en el intestino, en lugar de ser segregadas por células vivas durante su paso. De hecho, sólo se han detectado rastros de putrescina en el medio de cultivo de la levadura después de 96 horas de crecimiento exponencial, sin evidencia alguna de espermina o espermidina en el medio.

Debido a los efectos fisiológicos conocidos de las poliaminas exógenas en la maduración de las células intestinales, expresión enzimática y mecanismos de transporte, división de células crípticas, síntesis del ADN y la trascripción de genes, es posible que los aportes sustanciales de poliamina de Saccharomyces boulardii tengan implicancias clínicas importantes. Aunque se ha documentado muy bien el uso de Saccharomyces boulardii en casos de gastroenteritis aguda, diarrea asociada al uso de antibióticos y trastornos intestinales y colónicos causados por Clostridium difficile en niños, es necesario realizar investigaciones más exhaustivas sobre los efectos tróficos potenciales de la levadura en la prevención de la diarrea crónica persistente, la diarrea refractaria y la alergenicidad de las proteínas dietarias, así como los efectos de su uso como terapia de reemplazo para deficiencias enzimáticas congénitas (sacarasa-isomaltasa, trehalasa).

Además de los efectos tróficos mediados por las poliaminas, se ha abierto una gran ventana de investigación al estudiarse los efectos de Saccharomyces boulardii en ácidos grasos de cadena corta (AGCC): butirato, acetato, propionato. Los AGCC son unos de los metabolitos más importantes producidos por la flora anaeróbica del colon; desempeñan un papel fundamental en la absorción colónica de líquidos y electrolitos. [54] En un modelo ex vivo del ecosistema microbiano de un cerdo, la administración de Saccharomyces boulardii restauró la producción de AGCC a niveles normales, la misma que había disminuido debido al efecto destructivo de la clindamicina sobre la flora microbiana. [55] En un estudio clínico farmacológico realizado con pacientes que reciben únicamente alimentación enteral, el tratamiento con Saccharomyces boulardii produjo un incremento en las concentraciones fecales de los AGCC, particularmente butirato, hasta niveles comparables a los de los sujetos normales. [56] Esta propiedad responde, por lo menos parcialmente, al efecto antidiarreico de Saccharomyces boulardii en contextos clínicos donde la reducción de los AGCC tiene relación con las alteraciones de la flora colónica, como por ejemplo casos de diarreas asociadas al uso de antibióticos y diarreas asociadas a la alimentación enteral.

Efecto antisecretor

Saccharomyces boulardii disminuyó la secreción de líquidos (-39 %) y la permeabilidad al manitol (-5 %) inducida por la toxina A de Clostridium difficile en el íleon de la rata. [23, 25] Adicionalmente, Saccharomyces boulardii inhibió la secreción de cloruro inducida por las dos vías señalizadoras mediadas por el AMPc intracelular y los iones de calcio en las células intestinales de los vellos. [31,57]

Finalmente, en situaciones de administración preventiva en ratas, Saccharomyces boulardii produjo un efecto potente en casos de diarrea secretora inducida por el aceite de ricino, administrándose en dosis. [58] La L-arginina inhibió significativamente este efecto, lo que sugiere la implicación de la vía de óxido nítrico en este mecanismo.

Efecto inmunoestimulante

Durante el período de crecimiento de la rata, Saccharomyces boulardii incrementó significativamente (+ 57%) las concentraciones de IgA secretora en el líquido intestinal así como las concentraciones de la muestra secretora (+ 63 %) en las células crípticas de la mucosa intestinal. [52] Se observó una respuesta similar en los ratones BALB/c inoculados oralmente con el toxoide de la toxina A de Clostridium difficile, lo que incrementó ampliamente los niveles totales de IgA secretora (x 1,8) y los niveles de IgA secretora de la antitoxina A (x 4,4). [26]

Efecto antiinflamatorio

Los estudios sobre los mecanismos protectores de Saccharomyces boulardii contra la infección por EPEC y EHEC demostraron que Saccharomyces boulardii inhibe las MAP-quinasas y las vías de señalización NF-ºB así como la secreción de citocinas proinflamatorias IL-8. [40] De modo similar, Sogioultzis mostró un factor hidrosoluble secretado por Saccharomyces boulardii que también inhibe la señalización NF-ºB cuando las células intestinales están expuestas a la toxina A de Clostridium difficile. [59] Esta investigación plantea la posibilidad de realizar estudios clínicos sobre el efecto de Saccharomyces boulardii en el tratamiento de enfermedades intestinales inflamatorias idiopáticas criptogénicas (CIDI, en inglés).

En resumen, los mecanismos de acción antidiarreicos de Saccharomyces boulardii se definen principalmente a través de dos tipos de propiedades farmacodinámicas:

• Inhibición de ciertas toxinas bacterianas y/o sus efectos patógenos.

• Impacto directo en la mucosa intestinal que se traducen en efectos tróficos, acciones antisecretoras y la estimulación de la inmunidad.

• Efectos intestinales y antiinflamatorios.

ESTUDIOS CLÍNICOS

Diarrea asociada al uso de antibióticos y trastornos intestinales causados por Clostridium difficile

Dependiendo de cada autor, la diarrea asociada al uso de antibióticos (AAD, en inglés) genera complicaciones en 5 % a 30 % de los tratamientos con antibióticos. Los síntomas van desde una "simple" diarrea sin deshidratación ni trastornos de líquidos o electrolitos a severas diarreas secretoras que pueden ser fatales para el paciente, siendo la colitis pseudomembranosa o enterocolitis un caso extremo.

REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS

1. HENNEQUIN C, THIERRY A, RICHARD GF, et al. Microsatellite typing as a new tool for identification of Saccharomyces cerevisiae strains. J Clin Microbiol 2001; 39: 551-9.         [ Links ]

2. MAILLIÉ M, NGUYEN VAN P, BERTOUT S, VAILLANT C, BASTIDE.LM. Genotypic study of Saccharomyces boulardii compared to the Saccharomyces sensu stricto complex species. J Mycol Med 2001; 11;19-25.         [ Links ]

3. FULLER R. Probiotics in human medicine. Gut 1991; 32: 439-42.         [ Links ]

4. MARTEAU PR, DE VRESE M, CELLIER O, SCHREZENMEIR. Protection from gastrointestinal diseases with the use of probiotics. Am J Clin Nutr 2001; 73: 4305-65.         [ Links ]

5. ELMER GW, SURAWICZ CM, MCFARLAND LY. Biotherapeutic agents. A neglected modality for the treatment and prevention of selected intestinal and vaginal infections. JAMA 1996; 275: 870-6.         [ Links ]

6. MCFARLAND LV, BERNASCONI P. Saccharomyces boulardii: a review of an innovative biotherapeutic agent. Microbiol Ecology Health Dis 1993; 6; 57-171.         [ Links ]

7. BERGOGNE-BÉRÉZIN E. Impact écologique de l'antibiothérapie. Place des micro-organismes de substitution dans le contrôle des diarrhées et colites associées aux antibiotiques. Presse Med 1995; 24: 145-56.         [ Links ]

8. DUC!UZEAU R, BENSAADA M. Effet comparé de l'administration unique ou en continu du Saccharomyces boulardii sur l'établissement de diverses souches de Candida dans le tractus digestif de souris gnotoxéniques. Ann Microbiol (Pari,,) 1992; 133; 491-501.         [ Links ]

9. BLÉHAUT H, MASSOT J, ELMER GW, LEVY RH. Disposition kinetics of Saccharomyces boulardii in man and rat. Biopharm Drug Dispos 1989; 10; 353-64.         [ Links ]

10. BODDY AV, ELMER GW, MCFARLAND LV, LEVY RH. Influence of anlibiotics on the recovery and kinetics of Saccharomyces boulardii in rats. Pharm Res 1991; 8; 796-800.         [ Links ]

11. KLEIN SM, ELMER GW, MCFARLAND LV, SURAWICZ CM, LEVY RH. Recovery and elimination of the biotherapeutic agent, Saccharomyces boulardii, in healthy human volunteers. Pharm Res 1993; 10: 1615-9.         [ Links ]

12. ELMER GW, MCFARLAND LV, SURAWICZ CM, DANKOS L, GREENBERG RN. Behavior of Saccharomyces boulardii in recurrent healthy human volunteers. Aliment Pharmacol Ther 1999; 13; 1663-8.         [ Links ]

13. TOOTHAKER RD, ELMER GW. Prevention of Clindamycin-induced mortality in hamster by Saccharomyces boulardii. Antimicrobial Ag Chemother 1984; 26: 552-6.         [ Links ]

14. CORTHIER G, DUBOIS F, DUCLUZEAU R. Prevention of Clostridium difficile induced mortality in gnotobiotic mice by Saccharomyces boulardii. Clin J Microbiol 1986; 32: 294-6.         [ Links ]

15. CORTHIER G, LUCAS F, JOUVERT S, CASTEX F. Effect of oral Saccharomyces boulardii treatment on the activity of Clostridium difficile toxins in mouse digestive tract. Toxicon 1992; 30: 1583-9.         [ Links ]

16. MASSOT J, SANCHEZ 0, COUCHY R, ANTOIN J, PARODI AL. Bacterio-pharmacological activity of Saccharomyces boulardii in Clindamycin induced colitis in the hamster. Arzn-Forsch/Drug Res 1984; 34: 794-7.         [ Links ]

17. CASTEX F, CORTHIER G, JOUBERT S, ELMER GW, LUCAS F, BASTIDE M. Prevention of Clostridium difjicile-induced experimental pseudomembranous colitis by Saccharomyces boulardii: a scanning electron microscopic and microbiological study. J Gen Microbiol1990; 136; I085-9.         [ Links ]

18. CORTHIER G, MULLER MC, WILKINS TD, LYERLY D, L'HARIDON R. Protection against pseudomembranous colitis in gnotobiotic mice by use of monoc!onal antibodies against Clostridium difficile toxin A. Infect Immun 1991; 59; 1192-5.         [ Links ]

19. CZERUCKA D, NANO JL, Bernasconi P, Rampal P. Réponse aux toxines A et B de Clostridium difficile d'une lignée de cellules épithéliales de rat; IRD 98. Effet de Saccharomyces boulardii. Gastroenterol Clin Biol 1991; 15: 22-7.         [ Links ]

20. ELMER GW, CORTHIER G. Modulation of Clostridium difficile induced mortality as a function of the dose and viability of the Saccharomyces boulardii used as a preventative agent in gnotobiotic mice. Can J Microbiol 1991; 37: 315-7.         [ Links ]

21. ELMER GW, MCFARLAND LV. Suppression by Saccharomyces boulardii of toxinogenic Clostridium difficile overgrowth after vancomycin treatment in hamsters. Antimicrobiol Ag Chemother 1987; 31: 129-31.         [ Links ]

22. CZERUCKA D, RAMPAL P. Experimental effects of Saccharomyces boulardii on diarrheal pathogens. Microbes Infect 2002; 4: 733-9.         [ Links ]

23. POTHOULAKIS C, KELLY CP, JOSHI MA, el al. Saccharomyces boulartdii inhibits Clostridium difficile toxin A binding and enterotoxicity in rat ileum. Gastroenlerology 1993; 104: 1108-15.         [ Links ]

24. CASTAGLIUOLO L, LAMONT JT, NIKULASSON ST, POTHOULAKIS C. Saccharomyces boulardii protease inhibits Clostridium difficile toxin A effects in the rat ileum. lnfect lmmun 1996; 12: 5225-32.         [ Links ]

25. CASTAGLIUOLO L, RIEGLER MF, VALENICK L, LAMONT JT, POTHOULAKIS C. Saccharomyces boulardii protease mediates Clostridium difficile toxin A and B effects in human colonic mucosa. Infect Immun 1999; 67: 302-7.         [ Links ]

26. QAMAR A, ABOUDOLA S, WARNY M, et al. Saccharomyces boulardii stimulates intestinal immunoglobulin A immune response to Clostridium difficile toxin A in mice. Infect lmmun 2001; 69: 2762-5.         [ Links ]

27. TASTEYRE A, BARE MC, KARJALAINEN T, BOURLIOUX P, COLLIGNON A. Inhibition of in vivo cell adherence of Clostridium difficile by Saccharomyces boulardii. Microbiol Pathogen 2002; 32: 219-25,         [ Links ]

28. VIDON N, HUCHET B, RAMBAUD JC. Influence de Saccharomyces boulardii sur la sécrétion jéjunale induite chez le rat par la toxine cholérique. Gastroenterol Clin Biol 1986; 10: 13-6.         [ Links ]

29. CZERUCKA D, NANO JL, BERNASCONI P, RAMPAL P. Réponse à la toxine cholérique de deux lignées de cellules épithéliales intestinales. Effet de Saccharomyces boulardii. Gastroenterol Clin Biol 1989; 13: 383-7.         [ Links ]

30. CZERUCKA D, ROUX L, RAMPAL P. Saccharomyces boulardii inhibits secretagogue-mediated adenosine 3', 5' -cyclic monophosphate induction in intestinal cells. Gastroenterololy 1994; 106: 65-72.         [ Links ]

31. CZERUCKA D, RAMPAL P. Effect of Saccharomyces boulardii on cAM P-and Ca2+-dependent Cl≠ secretion in T84 cells. Dig Dis Sei 1999; 44: 2359-68.         [ Links ]

32. BARRETT KE. Positive and negative regulation of chloride secretion. Am J Physiol 1993; 265: C859-68.         [ Links ]

33. VENGLARIK CJ, BRIDGES RJ, FRIZEL RA. A simple assay for agonist-regulated CI and K conductances in salt-secreting epithelial cells. Am J Physiol 1990; 259: C358-64.         [ Links ]