SciELO - Scientific Electronic Library Online

 
vol.22 número3Seroprevalencia de cisticercosis porcina en caseríos rurales del departamento de Tumbes, PerúPrevalencia del virus de la diarrea viral bovina y de animales portadores del virus en bovinos en la provincia de espinar, Cusco índice de autoresíndice de materiabúsqueda de artículos
Home Pagelista alfabética de revistas  

Servicios Personalizados

Revista

Articulo

Indicadores

  • No hay articulos citadosCitado por SciELO

Links relacionados

Compartir


Revista de Investigaciones Veterinarias del Perú

versión impresa ISSN 1609-9117

Rev. investig. vet. Perú v.22 n.3 Lima jul./sep. 2011

 

Asociación entre rotavirus y la presencia de diarrea en lechones de granjas tecnificadas

Association between rotavirus and the presence of diarrhea in piglets from intensive pig farms

Miguel Rojas M.1, Alberto Manchego S.1,2, Hermelinda Rivera G. 1, Néstor Falcón P.3, Mercy Ramírez V. 1, Nieves Sandoval Ch.4

1 Laboratorio de Microbiología y Parasitología Veterinaria

2 E-mail: amanchegos@unmsm.edu.pe  

3 Facultad de Veterinaria y Zootecnia, Universidad Peruana Cayetano Heredia, Lima

4 Laboratorio de Histología, Embriología y Patología Animal, Facultad de Medicina Veterinaria, Universidad Nacional Mayor de San Marcos, Lima


RESUMEN  

El objetivo del estudio fue cuantificar la frecuencia del rotavirus y su asociación con la presentación de diarrea en lechones de dos granjas tecnificadas en la zona de Lima. El rotavirus fue identificado mediante la detección del genoma viral por electroforesis en gel de poliacrilamida (PAGE) en muestras de heces diarreicas (n=69) y no diarreicas (n=73) de lechones de 1 a 4 semanas de edad. Se empleó el diseño epidemiológico caso-control no pareado para establecer la asociación entre presentación de diarrea y presencia de rotavirus en heces, a través de una prueba de regresión logística múltiple (tipo de heces, procedencia, edad). La frecuencia de rotavirus porcino grupo A en heces diarreicas de la granja 1 fue de 41.4% ྫྷ/29) y en la granja 2 de 16.6% Ɣ/24), y en heces no diarreicas se detectó una muestra positiva en cada granja. La presencia de rotavirus porcino versus la ocurrencia de diarrea, ajustada a potenciales variables confundentes (edad y procedencia) presentó un Odds Ratio de 12.6 con un IC del 95% entre 2.7 y 59.3%, indicando que la presencia de rotavirus porcino representa un factor de riesgo para la ocurrencia de diarrea en lechones neonatos de granjas tecnificadas de la zona de Lima. Adicionalmente, se hallaron dos segmentos de ARN pertenecientes al genoma del Picobirnavirus porcino.  

Palabras clave: diarrea, lechones, Rotavirus, electroforesis, Picobirnavirus, odds ratio


ABSTRACT  

The objective of the study was to determine the frequency of rotavirus and its association with the occurrence of diarrhea in piglets reared in two intensive pig farms in Lima valley, Peru. The presence of rotavirus was determined by the identification of the viral genome using polyacrylamide gel electrophoresis (PAGE) in diarrheic (n=69) and non-diarrheic (n=73) fecal samples from 1 to 4 week-old piglets. The case-control epidemiological design was used to establish the association between the occurrence of diarrhea and the presence of rotavirus in feces, using a multiple logistic regression (type of feces, age, and origin). The frequency of porcine rotavirus group A in diarrheic stool samples from pig farm 1 was 41.4% ྫྷ/29) and from pig farm 2 was 16.6% Ɣ/24), and one positive was found in non diarrheic stool from each pig farm. The presence of porcine rotavirus versus occurrence of diarrhea, adjusted to potential confusing variables (age and origin) resulted in an Odds Ratio of 12.6 with a confidence interval between 2.7 and 59.3%. Additionally, two segments of RNA from the genome of porcine Picobirnavirus were found. It is concluded that the presence of porcine rotavirus represents a risk factor for the presentation of diarrhea in newborn piglets from intensive pig farms in Lima.  

Key words: diarrhea, piglets, Rotavirus, electrophoresis, Picobirnavirus, odds ratio  


INTRODUCCIÓN  

La diarrea neonatal en lechones es una de las enfermedades de mayor importancia en países con explotaciones porcinas de crianza intensiva, debido a las considerables pérdidas económicas causadas (Ramos et al., 1998). Factores como deficiencia en el manejo, y la presencia de agentes infecciosos de origen viral, bacteriano o parasitario, desencadenan generalmente los cuadros diarreicos que pueden cursar con alta morbilidad y mortalidad (Berrios y Patricio, 1989).  

Dentro de los agentes virales, los rotavirus son uno de los principales causantes de gastroenteritis en lechones en los periodos pre y post-destete, encontrándose prevalencias entre 14 y 91% (Reinhardt et al., 1986). La infección por rotavirus se caracteriza por una inflamación aguda del intestino delgado, diarrea, retardo en el crecimiento ྪ-15%) y hasta 100% de mortalidad en lechones de 1 a 8 semanas de edad, aunque con mayor incidencia entre la 1ª y 4ª semana de edad (Bohl, 1983; Pensaert, 1984; Klug, 1993; Alfieri, 2004).  

En el Perú, los problemas diarreicos en lechones son frecuentes y se ha demostrado el papel de agentes etiológicos como E. coli, Clostridium perfringens e Isospora suis, entre otros; aunque en muchos casos, estas infecciones suelen ser concomitantes o posteriores a la infección por rotavirus (Klug, 1993; Alfieri, 2004). No obstante, solo hay un estudio donde se reporta su presencia en casos de diarrea de lechones de granjas porcinas en el valle de Lima (Klug, 1993). Su identificación en los procesos diarreicos es necesaria para una mejor comprensión de la patogénesis y control de la enfermedad.  

Dada la importancia del rotavirus en la patogenia de la enteritis con los consecuentes efectos en la condición general de los lechones, el objetivo del presente trabajo fue demostrar su participación en casos de síndrome diarreico agudo en dos granjas tecnificadas en la zona de Lima utilizando la electroforesis en gel de poliacrilamida (PAGE) como método diagnóstico.  

MATERIALES Y MÉTODOS  

Granjas Porcinas  

El estudio se realizó en dos granjas tecnificadas de los distritos de Puente Piedra (granja 1) y Ate-Vitarte (granja 2), durante los meses de febrero a abril de 2008. La granja 1 presentaba un buen sistema de bioseguridad, poseía una población de 1200 marranas, 4000 lechones en recría y 5000 gorrinos en engorde y acabado con 50 gorrinos por corral. La granja 2 tuvo una población de 150 marranas, 50 lechones en recría y 80 gorrinos en engorde y acabado. En ambas granjas, los lechones fueron destetados entre 21 y 24 días de edad. Durante los meses de enero a junio de 2008 se incrementaron los problemas diarreicos en un 10 a 20% en lechones de 1 a 4 semanas de edad, según informes disponibles en ambas granjas.  

Tamaño de Muestra  

El cálculo del tamaño muestral (n = 130) se determinó utilizando la fórmula para estudios de caso-control no pareado (Rothman y Greenland, 1998), considerando una prevalencia de 28.3% (Barry et al., 2007), un Odds Ratio de 2.5, el nivel de confianza al 95% y un poder de la prueba de 80%.  

En la granja 1 se colectaron 41 muestras fecales diarreicas y 63 no diarreicas, y en la granja 2 se colectaron 28 muestras diarreicas y 10 muestras no diarreicas de lechones, en ambos casos en lechones de 1 a 4 semanas de edad y por única vez (Cuadro 1). Los lechones con y sin diarrea fueron elegidos al azar de la misma camada o de camadas distintas e indistintamente del fármaco recibido. Se colectó un mínimo de 2 g de heces por animal, directamente del recto. Las muestras se trasladaron al laboratorio de Virología de la Facultad de Medicina Veterinaria de la Universidad Nacional Mayor de San Marcos (FMV-UNMSM) en bolsas plásticas rotuladas, donde se almacenaron a -20 ºC hasta su procesamiento.  

 

Extracción de ARN y Corrida Electroforética  

Se extrajo el ARN viral de las muestras de heces siguiendo el protocolo buffer de lisisfenol- cloroformo-etanol (Sulbaran y Maldonado, 2000). Una vez extraído el ARN, se procedió al montaje de la unidad de electroforesis (Bio-Rad) según las especificaciones del fabricante, y de allí se separó el ARN genómico mediante electroforesis en gel de poliacrilamida (PAGE) al 7%, tiñéndose con nitrato plata para identificar las 11 bandas características del genoma de rotavirus (Figs. 1 y 2).  

Criterio Diagnóstico

Las muestras positivas a rotavirus fueron aquellas que mostraron las 11 bandas, toda vez que el rotavirus es el único virus que presenta 11 bandas en el PAGE al 7% (en cada gel se coloca una muestra del control positivo con fines comparativos). Los patrones de migración de los 11 segmentos de ARN que caracteriza al rotavirus determinan el electroferotipo de las muestras positivas.  

Cepas de Rotavirus  

Se utilizó las cepas de rotavirus SA11 y OSU procedentes de humano y porcino, respectivamente, y una cepa de rotavirus recombinante como controles positivos.  

Análisis Estadístico  

Se calculó el Odds Ratio (OR) mediante el modelo de Regresión Logística múltiple incluyendo el comportamiento de las variables predictorias: condición de las heces (diarreicas y no diarreicas), procedencia (Puente Piedra y Ate Vitarte), y edad Ƒ, 2, 3, y 4 semanas de edad), para la presentación de diagnóstico positivo a rotavirus porcino.  

RESULTADOS  

En el Cuadro 2 se indica los resultados obtenidos en las muestras provenientes de ambas granjas porcinas. El 23.2% ྰ/69) del total de muestras resultaron positivas a rotavirus porcino, en tanto que el 2.7% ƒ/ 73) del total de muestras no diarreicas fueron positivas a rotavirus (Cuadro 3). Dada la migración de los 11 segmentos RNA observado en el gel de poliacrilamida en la electroforesis, los genomas virales correspon den a un electroferotipo de Rotavirus Grupo A, mostrando una característica agrupación genómica de 4-2-3-2 (Figs. 1 y 2).  

 

 

Un hallazgo no previsto en el presente estudio, fue la identificación en los geles de poliacrilamida de dos segmentos de ARN pertenecientes al genoma del Picobirnavirus porcino. Esto fue observado con mayor claridad en muestras negativas a rotavirus (Fig. 1 y 2). Estos genomas se presentaron con una frecuencia de 5.6% Ƙ/142), ocurriendo solamente en lechones de 3 y 4 semanas de edad. El rol de este agente en la salud de los gorrinos requiere ser estudiado.  

DISCUSIÓN  

El rotavirus porcino fue detectado en el 41.4% ྫྷ/29) y 16.6% Ɣ/24) de muestras diarreicas de lechones de las granjas 1 y 2, respectivamente, mientras que solo dos lechones fueron positivos en el grupo de lechones sin diarrea de ambas granjas (Cuadro 2). Estos resultados indican que el rotavirus porcino fue uno de los agentes productores de diarrea en los lechones de las granjas porcinas muestreadas. El presente resultado es similar a las informaciones provenientes de otros países con gran desarrollo de la industria porcina, en donde el rotavirus porcino alcanza prevalencias entre 14% a más de 90% (Reinhardt et al., 1986; Barry et al., 2007). En la granja 2, la ocurrencia de diarrea en lechones fue más de 20% durante los meses del muestreo, pero solo 13.2% ƕ/38) de las muestras fueron positivas al rotavirus indicando que, además del rotavirus, pudo existir otras causas o factores que ocasionaron el incremento de diarreas.  

La frecuencia de 23.2% de rotavirus porcino en heces de lechones con diarrea versus a 2.7% en lechones sin diarrea indica un alto grado de asociación entre la presencia de rotavirus porcino y la diarrea en lechones, en las dos granjas tecnificadas de la zona de Lima (Cuadro 3). En algunos países de América Latina, donde la industria porcina ha alcanzado un gran desarrollo, como Chile y Brasil, el rotavirus es considerado como uno de los agentes infecciosos más importantes causante de diarreas en lechones (Rivas, 1983; Reinhardt et al., 1986; Alfieri et al., 2006; Barry et al., 2007).  

El 2.7% ƒ/73) de las muestras sin diarreas resultaron positivas a rotavirus, sugiriendo que la infección por rotavirus en ambas granjas estuvo difundiéndose entre los lechones a pesar de las medidas de bioseguridad, pero también se debe considerar que el rotavirus puede infectar lechones en forma subclínica, aunque en una menor frecuencia. Polanco et al. 񢉔) reportaron una prevalencia de rotavirus del 3.3% en lechones sin diarrea. La presencia de animales asintomáticos es importante en la epidemiología del rotavirus, ya que estos lechones son fuente del virus para los animales susceptibles, como los lechones recién nacidos (Alfieri, 2004).  

Los resultados indican, además, que el rotavirus representa un factor de riesgo para la presentación de diarrea en lechones neonatos en granjas tecnificadas de la zona de Lima (Cuadro 4). Asimismo, los datos muestran un potencial riesgo de infección para otros animales y, posiblemente, para las personas que están en contacto con estos animales en las granjas, ya que este virus ha sido reconocido como una posible entidad zoonótica (Acha y Syfres, 2003).  

 

 

La técnica de electroforesis (PAGE) en gel de poliacrilamida fue usada en el presente estudio por ser una de las técnicas de diagnóstico molecular de mayor confiabilidad, con una sensibilidad de 95% y una especificidad de 100% (Sulbaran y Maldonado, 2000; Nusetti et al., 2001). Además, es un método económico y práctico en comparación de otros métodos no asequibles en el país por su elevado costo y dificultad en el manejo de numerosas muestras para el diagnóstico, como es el caso de la microscopía electrónica (Iwona et al., 1996; Nusetti et al., 2001). Asimismo, los inmunoensayos enzimáticos comerciales (ELISA), si bien tienen alta sensibilidad ࿿-100%) que permiten diferenciar los serotipos del grupo “A”, tienen baja especificidad ࿫%), no permitiendo diferenciar los grupos de los rotavirus (Iwona et al., 1996; Sulbaran y Maldonado, 2000; Nusetti et al., 2001).  

El hallazgo de Picobirnavirus (PBV) porcino en los geles SDS PAGE es coincidente con hallazgos accidentales del genoma de PBV en Brasil, Venezuela y Argentina (Gatti et al., 1989; Ludert, 1994; Giordano et al., 1998). El PBV es un virus relativamente nuevo, ya que se descubrió en 1988, y hasta la fecha no se conoce bien su rol patógeno en animales y el humano, pero se sabe que está presente en todos los vertebrados (Pereira et al., 1988; Ludert, 1994). Se le encuentra mayormente en cuadros de diarrea en animales y humanos con inmunodepresión, por lo que es considerado como el segundo agente patógeno en importancia causante de diarrea en humanos con VIH (Liste et al., 2000). En el presente estudio, se encontró la misma frecuencia de PBV en lechones con ƕ.8%) y sin diarrea ƕ.5%), indicando que el virus no sería el causante de la diarrea; sin embargo, hay otros reportes que sugieren que este virus podría ser causante de diarreas en porcinos (Gatti et al., 1989).  

CONCLUSIONES  

  • La presencia de rotavirus porcino representa un factor de riesgo para la presentación de diarrea en lechones neonatos de granjas tecnificadas de la zona de Lima.  

  • El 2.7% de lechones asintomáticos resultaron positivos a rotavirus.  

  • Se reporta la presencia de picobirnavirus porcino en lechones.  

Agradeciemientos  

Los autores agradecen a Mariluz Arainga y Kim Lam Chiok por la asesoría prestada en el desarrollo de la técnica de PAGE.  

 

LITERATURA CITADA  

1. Acha P, Syfres B. 2003. Zoonosis y enfermedades transmisibles comunes al hombre y a los animales. 3ª ed. Washington OPS. 398 p.  

2. Alfieri AA. 2004. Epidemiología de la Rotavirosis Porcina. Av Tecnol Porc 2Ɨ- 8): 16-24.  

3. Alfieri AA, Parazzi ME, Takiuchi E, Médici KC, Alfieri AF. 2006. Frequency of group A rotavirus in diarrhoeic calves in Brazilian cattle herds, 1998-2002. Trop Anim Health Prod 38: 521-526.  

4. Barry AF, Linares RC, Alfieri AF, Feronato C, Grieder W, Alfieri AA. 2007. Frequency rate of group “A” Rotavirus in diarrheic suckling piglets from unvaccinated Brazilian pig herds. In: Anais do XIII Congresso Brasileiro de Veterinários Especialistas em Suínos. Florianópolis: ABRAVES.  

5. Berrios E, Patricio P. 1989. Presencia de Rotavirus en cerdos lactantes con sindrome diarreico. Avances Med Vet 4ƒ): 215-228.  

6. Bohl FH. 1983. Viral diarrhea in piglets. In: Annual Meeting AASP. Cincinnati, Ohio: American Association of Swine Practitioners.  

7. Gatti MS, de Castro AF, Ferraz MM, Fialho AM, Pereira HG. 1989. Viruses with bisegmented double-stranded RNA in pig faeces. Res Vet Sci 47: 397-398.  

8. Giordano MO, Martinez LC, Rinaldi D, Guinard S, Nasaretto E, Casero R, Yacci MR, et al. 1998. Detection of Picobirnavirus in HIV-infected patients with diarrehea in Argentina. J Acq Immun Def Synd 18: 380-383.  

9. Iwona M-D, Winiarczyk S, Gradzki Z, Pejsak Z. 1996. Evalaution of different methods (ELISA, IF, EM, PAGE) for the diagnosis of rotavirus infection in piglets. Comp Immunol Microbiol 19: 219-232.  

10. Klug H. 1993. RNA-PAGE en la detección de enteritis porcina por rotavirus. Tesis de Médico Veterinario. Lima: Facultad de Medicina Veterinaria, Univ Nacional Mayor de San Marcos. 18 p.  

11. Liste MB, Natera I, Suarez JA, Pujol FH, Liprandi F, Ludert JE. 2000. Enteric virus infections and diarrhea in healthy and human immunodeficiency virus-infected children. J Clin Microbiol 38: 2873-2877.  

12. Ludert JE. 1994. El viaje inverso: El descubrimiento de los Picobirnavirus. Interciencia 19Ɠ): 127-129. [Internet]. Disponible en: http//www. intercencia. org.ve  

13. Nusetti S, Maldonado A, Bastardo J. 2001. Comparación de tres métodos diagnósticos para la detección de Rotavirus en heces de niños diarreicos. Saber, Venezuela 13Ƒ): 38-41.  

14. Pensaert MB. 1984. Viral gastroenteritis in suckling pigs. Rev Sci Tech Off Int Epiz 3: 809-818.  

15. Pereira HG, Flewet TH, Candeias JAN, Barth OM. 1988. A virus with a bisegmented double-stranded RNA genome in rat (Oryzomys nigripes) intestines. J Gen Virol 69: 2749-2754.  

16. Polanco G, González M, Manzano L. 2004. Rotavirus en animales asintomáticos: Detección y clasificación antigénica, Arch Med Vet 36Ƒ): 65-70.  

17. Ramos AP, Stefanelli C, Linhares RE. 1998. The infectivity of pig rotavirus in stools. Braz J Vet Res Anim Sci 35ƒ): 84-87.  

18. Reinhardt G, Riedmann S, Polette M, Aguilar M. 1986. Diarrea neonatal: infección por rotavirus en bovinos y porcinos. Arch Med Vet 18: 23-27.  

19. Rivas C. 1983. Detección y caracterización de rotavirus en cerdos lactantes en la Región Metropolitana de Santiago de Chile. Tesis de Médico Veterinario. Santiago: Universidad de Chile. 45 p.  

20. Rothman K, Greenland S. 1998. Modern epidemiology. 2nd ed. Philadelphia: Lippincott Williams & Wilking. 738 p.  

21. Sulbaran MZ, Maldonado AJ. 2000. Método rápido de diagnóstico de rotavirus en heces. Saber, Venezuela. 12ƒ): 29-36.