Inmovilización química reversible de corta duración en perezosos de dos dedos (Choloepus didactylus) cautivos empleando ketamina, xilacina y midazolam

Lescano G, Jesús; Quevedo U, Miryam; Baselly C, Luis; Fernández A, Víctor

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Revista de Investigaciones Veterinarias del Perú

versión impresa ISSN 1609-9117

Rev. investig. vet. Perú vol.25 no.2 Lima abr. 2014

ARTÍCULOS PRIMARIOS

Inmovilización química reversible de corta duración en perezosos de dos dedos (Choloepus didactylus) cautivos empleando ketamina, xilacina y midazolam

Short-term reversible chemical immobilization of captive two-toed sloths (Choloepus didactylus) by using ketamine, xylazine and midazolam

Jesús Lescano G.^1,4, Miryam Quevedo U.¹, Luis Baselly C.³, Víctor Fernández A.²

1 Laboratorio de Anatomía Animal y Fauna Silvestre, Facultad de Medicina Veterinaria, Universidad Nacional Mayor de San Marcos, Lima

2 Clínica de Animales Menores, Facultad de Medicina Veterinaria, Universidad Nacional Mayor de San Marcos, Lima

3 Área de Investigación, Zoológico de Quistococha, Iquitos

4 E-mail: xtianlescano@gmail.com

RESUMEN

El estudio tuvo por objetivo evaluar la combinación ketamina (3 mg/kg), xilacina (1 mg/kg) y midazolam (0.2 mg/kg) para la inmovilización química de perezosos de dos dedos (Choloepus didactylus) y su reversión empleando los antagonistas yohimbina (0.125 mg/kg) y flumazenil (0.005 mg/kg). Se inmovilizaron tres individuos adultos cautivos y se registró la frecuencia respiratoria y cardiaca, saturación de oxígeno de la hemoglobina, presión sanguínea no invasiva y temperatura rectal cada 5 min por 25 min. Se tomaron los tiempos de inducción, inmovilización y recuperación y se evaluaron cualitativamente. La profundidad anestésica se evaluó mediante los reflejos y la relajación muscular. Se logró la inmovilización de los tres animales. Los tiempos de inducción y recuperación fueron de 3.84 ± 0.55 y 13.73 ± 0.64 min, respectivamente. La calidad de los tres periodos fue buena y sin efectos adversos. Los signos vitales, excepto la presión sanguínea durante la inmovilización, estuvieron dentro de los rangos fisiológicos. Se obtuvo buena relajación muscular y la profundidad anestésica permitió realizar los procedimientos de control sanitario. El protocolo utilizado podría utilizarse cuando se requiera un periodo de recuperación muy corto o cuando el posible desarrollo de hipertensión pueda ser adecuadamente controlado.

Palabras clave: anestesia, hipertensión, fauna silvestre, flumazenil, yohimbina, xenarthra

ABSTRACT

This study aimed to assess the combination of ketamine (3 mg/kg), xylazine (1 mg/ kg) and midazolam (0.2 mg/kg) for chemical restraint of two-toed sloths (Choloepus didactylus) and its reversal using yohimbine (0.125 mg/kg) and flumazenil (0.005 mg/kg). Three adults were immobilized. Respiratory and heart rate, hemoglobin oxygen saturation, non-invasive blood pressure and rectal temperature were measured every 5 min during 25 min. Induction, immobilization and recovery times were recorded and qualitatively assessed. Anesthetic depth was determined by assessing reflexes and muscle relaxation. Immobilization was achieved in all three animals. Induction and recovery times were 3.84 ± 0.55 and 13.73 ± 0.64 min respectively. Quality of the three periods was good and without adverse effects. Vital signs, excepting blood pressure during immobilization, remained within physiological ranges. Good muscle relaxation was observed and the anesthetic depth allowed the safety performing of all health control procedures. This protocol could be used when a very short recovery period is required or when the possible development of hypertension can be adequately controlled.

Key words: anesthesia, hypertension, wildlife, flumazenil, yohimbine, xenarthra

INTRODUCCIÓN

La captura e inmovilización de fauna silvestre puede conllevar al daño de los animales y el personal (Michalski et al., 2007). Los perezosos (suborden Phyllophaga) no son la excepción ya que pueden moverse muy rápido y morder al ser manipulados (West et al., 2007). La inmovilización química de perezosos es una maniobra que facilita la realización de procedimientos diagnósticos y terapéuticos en individuos mantenidos en cautiverio; asimismo, para su manipuleo en múltiples investigaciones (West et al., 2007). No obstante, existe poca información al respecto (West et al., 2007; Hanley et al., 2008).

Los xenartros pueden ser inmovilizados empleando anestésicos inhalatorios administrados mediante cámara anestésica, sin embargo, los perezosos y armadillos pueden permanecer en apnea por tiempo prolongado (Vogel et al., 1998; Fowler, 2008), reduciendo así la efectividad del método. Los periodos prolongados de recuperación en animales silvestres pueden afectar la supervivencia del individuo anestesiado (Auer et al., 2010). Es así que las combinaciones anestésicas que incluyen drogas reversibles son deseables, ya que permiten una recuperación rápida y suave que disminuye el riesgo de accidentes durante el periodo de recuperación (Fahlman et al., 2006).

Entre las combinaciones de drogas anestésicas para inmovilizar este tipo de animales se encuentran la ketamina, ketaminaacepromacina, ketamina-diazepam, ketaminamidazolam, tiletamina-zolazepam y ketaminamedetomidina (Vogel et al., 1998; Messías- Costa, 2001; West et al., 2007). De estas, solo la última incluye la administración de atipamezol como agente antagonista al final del procedimiento para revertir los efectos del componente agonista a2 adrenérgico (medetomidina). Recientemente, se ha reportado el uso de ketamina-dexmedetomidinamidazolam (KDMid) en Choloepus hoffmanni, con la inclusión de atipamezol (Rojas, 2011); sin embargo, dexmedetomidina ha dejado de ser ofrecida en el país (Coronel F, Lima, comunicación personal).

A pesar que las benzodiacepinas tienen efecto sinérgico con los agonistas a2 adrenérgicos (Bol et al., 2000), su uso dentro de una misma combinación anestésica en xenartros es poco reportada. Igualmente ocurre con el uso de antagonistas a2 adrenérgicos (yohimbina, atipamezol) (Vogel et al., 1998; Fournier-Chambrillon et al., 2000; Hanley et al., 2008; Orozco, 2011; Rojas, 2011), mientras que el uso de antagonistas benzodia-cepínicos (e.g. flumacenil, sarmacenil) aparentemente no ha sido reportado en xenartros.

El perezoso de dos dedos Choloepus didactylus (Pilosa: Megalonychidae) es unmamífero arbóreo de hábitos nocturnos, que habita en áreas tibias y húmedas de los bosques montanos y tierras bajas neotropicales, encontrándose en Brasil, Colombia, Ecuador, Guyana Francesa, Guyana, Perú, Surinam y Venezuela (Adam, 1999; Esbérard, 2001; Plese y Chiarello, 2013). Actualmente está clasificado dentro de la categoría Preocupación Menor de la Lista Roja de Especies Amenazadas de la Unión Internacional para la Conservación de la Naturaleza, aunque su tendencia poblacional es desconocida (Plese y Chiarello, 2013).

El presente trabajo tuvo por objetivo describir los efectos anestésicos y cardiorrespiratorios de la combinación anestésica ketamina-xilacina-midazolam (KXMid), revertida mediante yohimbina y flumazenil, en la inmovilización química de C. didactylus adultos mantenidos en cautiverio.

MATERIALES Y MÉTODOS

Animales

En el presente estudio participaron tres perezosos de dos dedos adultos (dos machos y una hembra), mantenidos en cautiverio en el Zoológico de Quistococha (Iquitos, Perú). Todos los animales se presentaron clínicamente sanos y el motivo de anestesia fue la realización del control sanitario rutinario.

Drogas Anestésicas

Como drogas anestésicas se emplearon clorhidrato de ketamina (Imalgene®, Merial, Francia) a dosis de 3 mg/kg, clorhidrato de xilacina (Dormi-xyl®, Agrovet Market, Perú) a dosis de 1 mg/kg y midazolam maleato (Midanex, AC Farma, Perú) a dosis de 0.2 mg/kg. Asimismo, como drogas antagonistas se emplearon clorhidrato de yohimbina (Yohimbine Vet, Richmond, Argentina) a dosis de 0.125 mg/kg y flumazenil (Flumazil, Cristália, Brasil) a dosis de 0.125 mg/kg.

Contención Física y Química

La contención física de los animales fue realizada mediante persecución directa empleando redes tipo nasa (West et al., 2007). Los animales se pesaron para calcular la cantidad de anestésicos a administrarse (el peso fue de 7.7 ± 0.6 kg). Los componentes de KXMid se inyectaron en forma intramuscular, mezclados en la misma jeringa. Los animales fueron mantenidos dentro de la red y aislados de estímulos externos. Al final del procedimiento se administró la yohimbina y el flumazenil vía intramuscular, usando jeringas diferentes.

Evaluación de Efectos Cardiorrespiratorios

Mientras se esperaba la inducción anestésica, se registró la temperatura y la humedad relativa ambiental empleando un termohigrómetro digital. Los signos vitales (frecuencia cardiaca y respiratoria, saturación de oxígeno, presión sanguínea no invasiva y temperatura corporal) fueron evaluados desde el inicio del periodo de inmovilización (0 min) cada cinco minutos durante 25 minutos.

La frecuencia cardiaca fue evaluada mediante auscultación torácica empleando un estetoscopio pediátrico (Littmann, Alemania) y conteo de los latidos durante 1 min. La frecuencia respiratoria fue determinada mediante observación directa de los movimientos torácicos inspiratorios durante 1 min. La saturación de oxígeno y la presión sanguínea no invasiva fueron medidas empleando un monitor veterinario de signos vitales (VS2000V, uBox, China). El sensor del oxímetro de pulso fue colocado en la lengua, mientras que el brazalete del tensiómetro fue colocado sobre el extremo distal del antebrazo (Fig. 1). La temperatura corporal fue evaluada empleando un termómetro ambiental digital con el sensor colocado en el recto.

Evaluación de Efectos Anestésicos

Duración y calidad de periodos de inducción, inmovilización y recuperación

El periodo de inducción fue considerado desde el momento de inyección de los anestésicos hasta que el animal se presentó en recumbencia y sin respuesta a estímulos dolorosos (se aplicó presión digital intensa en uno de los miembros). El periodo de inmovilización fue considerado desde el final del periodo de inducción hasta el momento de aplicación de las drogas antagonistas (en el minuto 25). El periodo de recuperación fue considerado desde el momento de administración de los antagonistas hasta que el animal se puso en pie y caminó con seguridad. La calidad de los periodos de inducción, inmovilización y recuperación fue evaluada empleando una escala numérica del 1 (buena) al 3 (insatisfactoria) según se muestra en el Cuadro 1 (Bakker et al., 2013).

Profundidad anestésica

Se determinó evaluando la relajación muscular (movimientos espontáneos, tono mandibular y respuesta a la manipulación) y los reflejos (palpebral y podal) a los 15 min de la inmovilización, empleando el esquema de calificación descrito por Lee et al. (2010). Para evaluar la respuesta a la manipulación se levantó uno de los miembros posteriores con una mano y le dejó caer sobre la otra mano. El reflejo podal se evaluó aplicando presión digital intensa sobre uno de los miembros posteriores. El reflejo palpebral se evaluó aplicando presión digital sobre el cantus medial. Las calificaciones fueron entre 1 (exacerbado) a 5 (ausente), según se muestra en el Cuadro 2, y fueron otorgadas por el mismo evaluador. La posición de las pupilas se evaluó en forma descriptiva.

Análisis de Datos

Se realizó estadística descriptiva de tendencia central (media) y dispersión (desviación estándar) para cada variable.

RESULTADOS

Se logró la inmovilización química de los tres animales. El tiempo de inducción fue de 3.8 ± 0.6 min y el de recuperación fue de 13.7 ± 0.6 min. La temperatura y humedad relativa ambiental fueron de 26.2 ± 0.3 °C y 83 ± 14%, respectivamente.

La calidad de los periodos de inducción, inmovilización y recuperación fue buena (1 ± 0). Las calificaciones para el reflejo palpebral y podal fueron de 3.7 ± 1.5 y 4.7 ± 0.6, respectivamente; en tanto que para los movimientos espontáneos, tono mandibular y respuesta a la manipulación fueron de 5 ± 0, 4.3 ± 0.6 y 5 ± 0, respectivamente. Dos animales presentaron rotación ventro-medial de las pupilas y en un caso permanecieron en posición central.

Los signos vitales permanecieron dentro de los rangos fisiológicos durante todo el procedimiento (Cuadro 3, Fig. 2 y 3). Por otro lado, no se pudo medir la presión sanguínea al inicio y a los 10 minutos de inmovilización por problemas técnicos.

DISCUSIÓN

La dosis de ketamina empleada en el presente estudio fue menor que las dosis empleadas en asociación a acepromacina (KA), xilacina (KX) (Vogel et al., 1998) y midazolam (KMid) (West et al., 2007), pero similar a la dosis en asociación a medetomidina (KM) (Vogel et al., 1998; West et al., 2007) y dexmedetomidinamidazolam (KDMid) (Rojas, 2011) en la inmovilización de perezosos.

El tiempo de inducción anestésica observado en el presente trabajo fue menor que en otros estudios empleando KDMid (Rojas, 2011) o KA (Vogel et al., 1998) en C. hoffmanni. Asimismo, los tiempos de inducción la inmovilización de C. didactylus con KX y KM y con tiletamina-zolazepam (TZ) (Vogel et al., 1998) fueron similares o menores que el observado en el presente estudio. Por otro lado, la calidad del periodo de inducción obtuvo el mismo calificativo (buena) que en el estudio de Rojas (2011) en C. hoffmanni, aunque en ese trabajo no se detallan las características de la calificación.

El tiempo de recuperación fue menor que los reportados para C. didactylus inmovilizados con KA, KX y TZ (Vogel et al., 1998) y similar a los tiempos reportados en C. hoffmanni inmovilizados con KDMid (Rojas, 2011) y en C. didactlyus inmovilizados con KM (Vogel et al., 1998), en ambos casos, revertidos con atipamezol. Si se considera que el tiempo de recuperación en Choloepus spp anestesiados con TZ varió entre 2 a 6 horas (Gilmore et al., 2000), se puede considerar como óptimo el tiempo obtenido en el presente trabajo.

El tiempo de inmovilización fue suficiente para realizar los exámenes requeridos, siendo un tiempo menor que los descritos en otros estudios para Choloepus spp (Hanley et al., 2008; Vogel et al., 1998; Rojas, 2011). Los resultados sugieren que se puede inmovilizar C. didactylus por periodos más cortos sin perjudicar la colecta de muestras biológicas y el examen físico, favoreciendo la rápida recuperación y retorno a la actividad normal de los individuos. Esto es importante cuando se trabaja con individuos capturados en vida libre que deben ser prontamente liberados.

La profundidad anestésica se caracterizó por la depresión total o casi total de reflejo podal, depresión moderada de reflejo palpebral y rotación ventromedial de las pupilas en 2 de los 3 animales. Este resultado sugiere la obtención de un plano anestésico profundo durante la inmovilización, ya que hubo ausencia de respuesta a la manipulación y de movimientos espontáneos, mientras que el tono mandibular fue mínimo o ausente. La descripción del grado de relajación muscular y reflejos fue similar el trabajo de Rojas (2011).

La frecuencia cardiaca fue similar a la observada en C. hoffmanni anestesiados con KDMid (Rojas, 2011) y KM (Hanley et al., 2008), aunque mayor a la observada en C. didactylus anestesiados con KX y KM (Vogel et al., 1998). Considerando que la frecuencia cardiaca normal en perezosos es de 45-60 latidos por minuto (West et al., 2007), en este estudio no se observó taquicardia ni bradicardia; sin embargo, se observó una ligera disminución de la frecuencia respiratoria durante el periodo de anestesia, similar a la que se describe en el trabajo de Hanley et al. (2008).

La frecuencia respiratoria se ubica dentro del rango referencial de 10-80 respiraciones por minuto conocido para perezosos (West et al., 2007). Esta frecuencia fue ligeramente mayor que las observadas en Choloepus spp anestesiados con KM (Vogel et al., 1998; Hanley et al., 2008), menor que las observadas en C. didactylus anestesiados con KA y TZ (Vogel et al., 1998) y similar a la observada en C. hoffmanni anestesiados con KDMid (Rojas, 2011).

Hanley et al. (2008) describe una disminución considerable en la frecuencia respiratoria en C. hoffmani por efecto de la anestesia. La frecuencia respiratoria cercana al límite inferior del rango referencial observada en el presente estudio, fue posiblemente consecuencia del empleo de xilacina, ya que este efecto ha sido ampliamente asociado a agonistas a2 adrenérgicos (Hanley et al., 2008; Pawson, 2008).

La saturación de oxígeno periférica (SpO2) se mantuvo en niveles clínicamente seguros durante todo el procedimiento de inmovilización. Los menores valores de SpO2 (88 ± 5%) fueron registrados a los 5 min de inmovilización pero se normalizaron rápidamente, manteniéndose estables el resto del tiempo. Por otro lado, Vogel et al. (1998) reportó una disminución considerable de SpO2 en C. didactylus anestesiados con TZ. El promedio de SpO2 observado en el presente estudio fue similar a los descritos en C. didactylus anestesiados con KM (Vogel et al., 1998; Hanley et al., 2008) y KX (Vogel et al., 1998), así como en C. hoffmani anestesiados con KDMid (Rojas, 2011).

La temperatura corporal se mantuvo dentro del rango referencial conocido para xenartros (Gilmore et al., 2000), donde los valores concuerdan con los reportados por Hanley et al. (2008) utilizando KM. No obstante, fueron mayores a los descritos en C. hoffmanni anestesiados con KDMid (Rojas, 2011). Es posible que la mayor temperatura ambiental durante la inmovilización de los animales en el presente estudio haya tenido un efecto en la temperatura corporal registrada, ya que los perezosos son animales poiquilotermos (Vogel et al., 1998).

En base a los valores de normotensión descritos por Gilmore et al. (2000), los individuos del presente trabajo presentaron hipertensión durante la inmovilización. La presión sanguínea fue considerablemente mayor que las descritas en C. hoffmanni anestesiados con KDMid (Rojas, 2011) y en C. didactylus anestesiados con KM (Hanley et al., 2008). No obstante, la hipertensión observada disminuyó hasta valores normales cinco minutos después de la administración de yohimbina y flumazenil, lo cual sugiere que la hipertensión observada se debería al efecto de la xilacina ya que no se ha descrito problemas hipertensión con midazolam (Pawson, 2008). Por su parte, los agonistas a2 adrenérgicos (xilacina, medetomidina) producen hipertensión inicial seguida de hipotensión, debido a sus efectos periféricos, siendo variable la duración de la fase de hipertensión (Gross, 2001; Hanley et al., 2008; Pawson, 2008). Además, las ciclohexaminas (ketamina) producen hipertensión debido al incremento de acción del sistema nervioso simpático (Pawson y Forsyth, 2001).

CONCLUSIONES

El tiempo y la calidad de los periodos de inducción, inmovilización y recuperación con el protocolo KXMid fueron buenos y similares a los obtenidos por los protocolos KM y KDMid en Choloepus spp en otros estudios.

Los signos vitales no presentaron variaciones considerables durante el periodo de inmovilización con KXMid, pero se observó hipertensión inicial.

El protocolo utilizado podría utilizarse cuando se requiera un periodo de recuperación muy corto o cuando el posible desarrollo de hipertensión pueda ser adecuadamente controlado.

Agradecimientos

Los autores del presente trabajo agradecen el apoyo brindado por el Blgo. Víctor Reátegui, la Bach. Jessy Alfonso y la estudiante Diana Cornejo durante la ejecución de las inmovilizaciones. Asimismo, se reconoce el apoyo logístico brindado por la administración del Zoológico de Quistococha y el grupo estudiantil Círculo Veterinario de Estudios en Fauna Silvestre (CIVEFAS) de la Facultad de Medicina Veterinaria de la Universidad Nacional Mayor de San Marcos.

LITERATURA CITADA

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Recibido: 22 de octubre de 2013

Aceptado para publicación: 19 de diciembre de 2013

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