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Revista de Investigaciones Veterinarias del Perú

versión impresa ISSN 1609-9117

Rev. investig. vet. Perú vol.30 no.3 Lima jul./set 2019

http://dx.doi.org/10.15381/rivep.v30i3.16733 

ARTÍCULOS PRIMARIOS

 

Efecto de dietas con alta concentración de Saccharomyces cerevisiae sobre la proliferación de hemocitos en camarones Cryphiops caementarius machos

Effect of diets with high concentration of Saccharomyces cerevisiae on the proliferation of hemocytes in male shrimp Cryphiops caementarius

 

Elizabeth Cabrera P.1, Zanny Marcelo T.1, Walter Reyes A.1,3, Carlos Azañero D.2

1 Laboratorio de Acuicultura Ornamental, Departamento Académico de Biología, Microbiología y Biotecnología, Universidad Nacional del Santa, Nuevo Chimbote, Ancash, Perú

2 Laboratorio de Microbiología y Bioquímica, Departamento Académico de Biología, Microbiología y Biotecnología, Universidad Nacional del Santa, Nuevo Chimbote, Ancash, Perú

3 E-mail: wreyes_avalos@hotmail.com


RESUMEN

El objetivo del estudio fue evaluar el efecto de dietas con alta concentración de Saccharomyces cerevisiae sobre la proliferación de hemocitos en camarones Cryphiops caementarius machos. Los camarones (5.3 ± 1.2 cm de longitud total y 7.4 ± 2.9 g de peso total) se colectaron del río Pativilca (Perú). Cada camarón se mantuvo en un recipiente instalado dentro del acuario (seis camarones por acuario). Se empleó una dieta control (3% de levadura) y tres dietas experimentales (6, 9 y 12% de levadura) con dos repeticio- nes por tratamiento durante 28 días de cultivo. El número total de hemocitos fue mayor (p<0.05) con 6% de levadura (134.75 x 105 cél/ml), así mismo el número de granulocitos (31.44 x 105 cél/ml) y semigranulocitos (102.44 x 105 cél/ml). El número de hialinocitos disminuyó en todos los tratamientos y se mantuvo entre 0.31 y 1.56 x 105 cél/ml. El número de hemocitos atípicos se mantuvieron bajos en todos los tratamientos y sin diferencias con el basal (0.31 x 105 cél/ml). La dieta con 6% de levadura incrementó (p<0.05) el número total de hemocitos y los hemocitos granulocitos y semigranulocitos en los camarones machos C. caementarius. En cambio, las dietas con 9 y 12% de levadu- ra afectaron (p<0.05) la proliferación de hemocitos totales y diferenciales.

Palabras clave: Saccharomyces; Cryphiops; hemocitos; camarón; hematopoyesis


ABSTRACT

The aim of this study was to evaluate the effect of diets with high concentration of Saccharomyces cerevisiae on the proliferation of hemocytes in male shrimp Cryphiops caementarius. The shrimp (5.3 ± 1.2 cm of total length and 7.4 ± 2.9 g of total weight) were collected from the Pativilca River (Peru). Each shrimp was kept in a container installed inside the aquarium (six shrimp per aquarium). A control diet (3% yeast) and three expe- rimental diets (6, 9 and 12% yeast) were used with two repetitions per treatment during 28 days of culture. The total number of hemocytes was higher (p<0.05) with 6% yeast (134.75 x 105 cells/ml), as well as the number of granulocytes (31.44 x 105 cells/ml) and semigranulocytes (102.44 x 105 cells/ml). The number of hyalinocytes decreased in all treatments and remained between 0.31 and 1.56 x 105 cells/ml. The number of atypical hemocytes remained low in all treatments and without differences with the baseline (0.31 x 105 cells/ml). The diet with 6% yeast increased (p<0.05) the total number of hemocytes and the granulocyte and semigranulocyte hemocytes in C. caementarius male shrimps. In contrast, diets with 9 and 12% of yeast affected (p<0.05) the proliferation of total and differential hemocytes.

Key words: Saccharomyces, Cryphiops; haemocytes; shrimp; hematopoiesis


INTRODUCCIÓN

El camarón Cryphiops caementarius (Molina 1782) se distribuye en la vertiente occidental de los Andes, desde el río Taymí en Perú (Méndez, 1981) hasta el río Maipo en Chile (Jara, 1997), pero abunda en los ríos Cañete, Ocoña, Majes-Camaná y Tambo en Perú (Zacarías y Yépez, 2015; Wasiw y Yépez, 2017). La extracción de camarón al 2017 fue de 996 t (Produce, 2018), cuyo principal mercado es la ciudad de Lima, Perú, por la alta demanda en gastronomía. Esta especie de camarón tiene alto valor económico y es prioritaria para cultivo comercial (Brack, 2000); sin embargo, investigaciones sobre parámetros inmunológicos de la especie son escasos.

El sistema inmune de los crustáceos está basado en efectores celulares y humorales, que se conjugan para eliminar microorganismos infecciosos, donde los hemocitos circulantes que constituyen la fracción celular de la hemolinfa realizan fagocitosis, encapsulación, formación de nódulos y producen citotoxicidad (Bachere, 2000; Rendón y Balcázar, 2003; Cerenius et al., 2010; Fonseca et al., 2013). El número total de hemocitos (NTH) y el número diferencial de hemocitos (NDH) de los crustáceos cambian de acuerdo con la especie, sexo, estación de año, enfermedades y condiciones del ambiente, entre otros (Johansson et al., 2000; Gelibolu et al., 2009; Pacheco et al., 2012).

Los crustáceos carecen de una verdadera respuesta inmune adaptativa y, por tanto, tienen que depender de mecanismos inmunes innatos muy eficientes en donde los hemocitos desempeñan un papel clave (Lin y Söderhäll, 2011). Los componentes de las paredes de bacterias Gram negativas (lipopolisacáridos), Gram positivas (péptidoglicanos) y de hongos, levaduras y algas (β-glucanos), estimulan el sistema inmune de los crustáceos (Rendón y Balcázar, 2003). La formación y desarrollo de hemocitos maduros implica proliferación y diferenciación de células en el tejido hematopoyético (Lin y Söderhäll, 2011). Los inmunoestimulantes e inmunomoduladores se incorporan a la dieta para uso continuo porque no generan resistencia ni acostumbra- miento y no demandan energía (Berger, 2000); sin embargo, es necesario conocer la dosis adecuada que incremente la respuesta inmune y evite estrés fisiológico en los camarones (Campa-Córdova et al., 2010).

La levadura Saccharomyces cerevisiae no solo aporta ß-glucanos y mananooligosacáridos, sino también con superóxido dismutasa que incrementa la actividad antioxidante y estimula la proliferación de hemocitos circulantes (Pacheco et al., 2012). Subramanian et al. (2012) adicionaron 10% de S. cerevisiae en la dieta de Penaeus monodon y los animales incrementaron sus hemocitos totales, la fenoloxidasa y mostraron alta actividad antibacterial. De esta manera, los camarones con mayor número de hemocitos son resistentes a infecciones bacterianas (Le Moullac et al., 2000). En C. caementarius, Cornejo et al. (2015) utilizaron solo 3% de S. cerevisiae en la dieta y lograron incrementar el número total de hemocitos, así como los hemocitos granulocitos y semigranulocitos. Sin embargo, no se conoce la respuesta hemocitaria de este camarón alimentado con otras concentraciones de levadura. Por consiguiente, el objetivo del estudio fue evaluar el efecto de dietas con alta concentración de S. cerevisiae sobre la proliferación de hemocitos en camarones C. caementarius machos

MATERIALES Y MÉTODOS

Los Organismos

Los camarones machos se colectaron del río Pativilca, cerca del Centro Poblado Huayto (10°39¹50¹¹ S, 77°40¹09¹¹ W), Lima, Perú. Para el transporte de camarones se empleó el sistema utilizado por Reyes (2016), donde cada camarón se introdujo en un vaso plástico de 200 ml (con agujeros para el flujo de agua), acondicionados en recipientes de plástico (45 l) con agua del mismo río, aireación constante y 50 camarones por recipiente. El transporte terrestre duró 4.5 h y no hubo mortalidad. Los camarones de la especie C. caementarius se reconocieron según Méndez (1981) y el sexo de los machos se verificó por la presencia de gonóporos en los coxopoditos del quinto par de periópodos (Reyes et al., 2018). Los camarones se aclimataron durante siete días en el mismo sistema de transporte y se alimentaron con balanceado (30% de proteína cruda).

Sistema de Cultivo

El sistema de cultivo fue el empleado por Reyes (2016), que consistió en ocho acuarios de vidrio (0.60 m de largo, 0.31 m de ancho, 0.35 m de alto) de 55 l con sistema de recirculación de agua tipo air-water-lift y filtro biológico percolador (1.5 l/min). Dentro de cada acuario (unidad experimental) se instalaron seis recipientes de plástico transparente con tapa (19 cm de diámetro, 284 cm2) que se dispusieron en dos grupos de tres niveles. Los recipientes tuvieron aberturas en sus paredes para permitir el flujo de agua y un tubo de PVC de ½ pulgada de diámetro que sobresalió 10 cm sobre el nivel del agua, por donde se introdujeron los pellets de alimento. En cada recipiente se sembró un camarón, que equivalió a seis camarones por acuario (32 camarones/m2). Se emplearon 48 camarones machos (5.3 ± 1.2 cm de longitud total y 7.4 ± 2.9 g de peso total), con apéndices cefalotorácicos completos y en estados de muda entre C y D1 (Promwikorn et al., 2004).

Alimento

La levadura comercial (levadura seca instantánea masa dulce de Fleischmann®) tuvo como ingredientes a S. cerevisiae, monoestearato de sorbitán y ácido ascórbico. Esta levadura se activó con el método de Martínez-Rodríguez et al. (2001) y Perdomo et al. (2004), con modificaciones en la incubación (37 ºC por 24 h). Luego se centrifugó (5000 rpm por 15 min) y el sedimento húmedo se utilizó como aditivo en las dietas. Se empleó la dieta estándar (30% de proteína cruda, 8.1% de lípidos y 4.6% de fibra, con 2600 kcal/g) formulada específicamente para C. caementarius (Reyes, 2016). Los pellets de la dieta estándar se molieron en mortero hasta obtener polvo fino; luego, se adicionó el sedimento de levadura activada de acuerdo con cada tratamiento y se roció agua destilada para formar una pasta que se peletizó a baja temperatura en una máquina de procesamiento para carne molida. Las hebras de alimento de 0.3 mm de diámetro se secaron en estufa (40 °C por 24 h) y luego se quebraron hasta obtener pellets de 5 mm de longitud. Se emplearon tres dietas experimentales (6, 9 y 12% de levadura activada) y una dieta control (3% de levadura activada, según Cornejo et al., 2015), cada una con dos repeticiones. La ración diaria (08:00 y 19:00) fue del 6% del peso húmedo por camarón, que se distribuyó en iguales proporciones durante seis días a la semana.

Hemolinfa

La extracción de hemolinfa se realizó de dos camarones por tratamiento y por muestreo al inicio del experimento y luego cada siete días durante cuatro semanas de cultivo. A cada camarón se le extrajo hemolinfa una sola vez. Los camarones seleccionados se les mantuvo en ayunas por 12 h antes de la extracción de hemolinfa. Para la extracción, cada camarón se mantuvo por 5 min en un recipiente plástico (4 l) con agua dulce preaireada; se retiró al camarón, se le envolvió con tela y se descubrió la zona dorsal entre el cefalotórax y el abdomen, y con una jeringa de 1 ml (insulin syringe 26 G ½) se extrajo la hemolinfa (~0.10 ml) del seno pericárdico.

Para determinar el NTH y el NDH se utilizó 20 μl de hemolinfa y se adicionó a un microtubo (Eppendorf) con 80 μl de solución Alsever (van de Braak, 2002). El conteo de hemocitos se realizó en cámara de Neubauer bajo microscopio LEICA DM LS2 de luz convencional de campo luminoso provisto de contraste de fases.

El NTH y el NDH (hemocitos granulocitos [HG], hemocitos semigranulocitos [HSG], hemocitos hialinos [HH] y hemocitos atípicos [HA]) se determinaron según Hose et al. (1990) con las fórmulas de Jussila (1997): NTH (células/ml) = (Hc*D*C)/0.4 y NDH (células/ml) = (Hd*D*C)/0.4, donde Hc es el número total de hemocitos contados, D el factor de dilución de la hemolinfa, C la conversión del factor x 0.1 mm3 x ml (1000) y Hd el número de hemocitos diferenciales contados.

Calidad del Agua

Los desechos sólidos acumulados en los acuarios se extrajeron todos los días con sifón. El 30% del agua de cada acuario se renovó dos veces por semana. El agua de los acuarios se monitoreó cada semana y se determinó oxígeno disuelto y temperatura con Oxímetro Hatch LDO (± 0.01 mg/l; ± 0.01 ºC), pH con pH-metro digital 110 (± 0.01 unidades) y amonio total y nitritos con test colorimétrico Nutrafin (± 0.5 mg/l).

Análisis Estadístico

Los resultados se sometieron a la prueba de Kolmogorov-Smirnov para determinar la normalidad de datos. Se aplicó el análisis de varianza de una vía y la prueba de Duncan, así como la prueba t Student para comparar el NTH y NDH basales con los obtenidos en cada muestreo. En todos los casos se empleó el nivel de significancia del 5%. Los datos se expresaron como media ± desviación estándar. Todos los análisis se efectuaron con el software SPSS v. 23 para Windows.

RESULTADOS

Calidad del Agua

Los parámetros de calidad del agua fue- ron similares entre tratamientos. La temperatura varió entre 25.5 y 26.8 ºC, el pH entre 7.05 y 7.21, el oxígeno disuelto entre 3.70 y 5.40 mg/l, los nitritos fueron de 0.10 mg/l y no se detectó amonio total.

Número Total de Hemocitos

El NTH basal de los camarones fue de 11.06 ± 1.50 x 105 cél/ml, habiendo un incremento abrupto en los primeros siete días (p<0.05) en todos los tratamientos. El NTH de los camarones alimentados con 6% de levadura incrementó (p<0.05) a los 21 días (88.31 ± 5.26 x 105 cél/ml) y 28 días de cultivo (134.75 ± 2.30 x 105 cél/ml). El NTH de aquellos alimentados con 9% de levadura incrementó (p<0.05) en los primeros siete días, pero disminuyó en el tiempo. En los demás tratamientos, el NTH varió con el tiempo y no superaron los 78 x 105 cél/ml (Figura 1a).

Hemocitos Granulocitos

El número de HG basal de los camarones fue de 3.19 ± 0.62 x 105 cél/ml y hubo un incremento abrupto (p<0.05) en los primeros siete días en todos los tratamientos. Los camarones alimentados con 6% de levadura incrementaron (p<0.05) los HG a los 14 días (16.06 ± 1.68 x 105 cél/ml), 21 días (18.06 ± 0.80 x 105 cél/ml) y 28 días de cultivo (31.44 ± 3.45 x 105 cél/ml). Los HG fluctuaron en el tiempo en los otros tratamientos y no supera- ron los 23 x 105 cél/ml (Figura 1b).

Hemocitos Semigranulocitos

El número de HSG basal de los camarones fue de 6.00 ± 1.24 x 105 cél/ml, y hubo un incremento abrupto a los siete días (p<0.05) en todos los tratamientos. Los camarones alimentados con 6% de levadura incrementaron (p<0.05) los HSG a los 21 días (69.13 ± 6.898 x 105 cél/ml) y 28 días de cultivo (102.44 ± 5.57 x 105 cél/ml). Los HSG fluctuaron en el tiempo en los demás tratamientos y no superaron los 57 x 105 cél/ml (Figura 2a).

Hemocitos Hialinocitos

El número de HH basal de los camarones fue de 1.56 ± 0.44 x 105 cél/ml. Los HH de aquellos alimentados con 6% de levadura incrementaron (p<0.05) a los siete días de cultivo (3.19 ± 0.62 x 105 cél/ml), para luego disminuir con el tiempo hasta 0.39 ± 0.09 x 105 cél/ml. A los 14 días se registró incre- mento abrupto (p<0.05) de los HH en los camarones alimentados con 3% (6.38 ± 0.53 x 105 cél/ml) y 12% (3.56 ± 0.62 x 105 cél/ ml) de levadura, para luego disminuir de la misma manera a través del tiempo. Los HH de los alimentados con 9% de levadura se mantuvieron bajos (~ 0.8 x 105 cél/ml) durante el periodo experimental (Figura 2b).

Hemocitos Atípicos

El número de HA basal de los camarones fue de 0.31 ± 0.09 x 105 cél/ml. Los HA se mantuvieron bajos durante los 28 días de cultivo y sin diferencias con los HA basal; excepto en aquellos alimentados con 12% de levadura cuyos HA a los 21 días fue alto (0.56 ± 0.09 x 105 cél/ml) y mucho más alto a los 28 días (1.13 ± 0.18 x 105 cél/ml) con relación al basal y con los demás tratamientos que fluctuaron entre 0.19 ± 0.09 x 105 cél/ml y 0.38 ± 0.18 x 105 cél/ml (Figura 3).

Número Relativo de Hemocitos

La alimentación de camarones durante 28 días con diferentes proporciones de leva- dura en la dieta ocasionó incremento relativo (p<0.05) en el número de los HSG (73 – 86%) y disminución (p<0.05) de los HG (de 23 a 11%) con relación a los hemocitos del basal (54 y 28%, respectivamente). En cambio, se obtuvo diminución (p<0.05) de los HH (de 2.43 a 0.51%) y HA (de 0.14 a 1.96%) con relación a los hemocitos del basal (14.11 y 2.80%, respectivamente) (Cuadro 1).

DISCUSIÓN

La calidad del agua de cultivo de C. caementarius fue similar entre tratamientos y estuvieron dentro de lo registrado para el hábitat de la especie (Wasiw y Yépez, 2017). Además, fue semejante a las condiciones normales de laboratorio donde se experimenta con la especie en el mismo sistema de cultivo (Cornejo et al., 2015; Reyes, 2016). En consecuencia, la variación de los hemocitos de los camarones se debió a la presencia de la levadura S. cerevisiae en las dietas.

El NTH basal (11.06 x 105 cél/ml) y el NDH basal de los HG (3.19 x 105 cél/ml), HSG (6.00 x 105 cél/ml) y HH (1.56 x 105 cél/ml) de C. caementarius fueron aproximadamente tres veces mayor que los obtenidos previamente (Cornejo et al., 2015), lo que sugiere que los camarones del presente estudio estuvieron en mejores condiciones inmunológicas o que procedieron de un ambiente estable. Sin embargo, no se determinó la calidad del agua del río de procedencia de los camarones en ambas investigaciones. Las variaciones en los hemocitos circulantes en Callinectes sapidus se deben a la temporada y a las condiciones ambientales, entre otros factores (Gelibolu et al., 2009).

Las concentraciones de levadura en la dieta ocasionaron incrementos abruptos del NTH, HG y HSG de C. caementarius en los primeros siete días de alimentación, lo que significa que los camarones respondieron rapidamente a la levadura proporcionada. Sin embargo, en estos primeros días, los mayo- res valores en el NTH y HSG se obtuvieron con 9% de levadura (p<0.05), lo que sugiere que esta sería la concentración de levadura en la dieta para estimular de manera rápida la proliferación de hemocitos de la especie, aun- que este valor disminuyó a los 14 días, probablemente debido al exceso de levadura que afectó la hematopoyesis, como ha sido sugerido por Chang et al. (2000) en P. monodon.

En cambio, la dieta con 6% de levadura ocasionó incremento (p<0.05) del NTH des- de los 21 hasta los 28 días de cultivo (134.75 x 105 cél/ml), tiempo en que se alcanzaría la máxima cantidad de hemocitos totales registrados para C. caementarius, lo que indica- ría un mejor estado inmunológico respecto a los valores basales, y a lo informado por Cornejo et al. (2015) aunque con 3% de levadu- ra en la dieta (33.05 x 105 cél/ml). El incremento de hemocitos totales se relaciona con el estado nutricional de los crustáceos, cuya respuesta inmune se ref ue rza con los inmunoestimulantes de la levadura (Le Moullac et al., 2000) y que en Litopenaeus vannamei les permite resistir infecciones bacterianas y virales (Campa y Luna, 2011). Además, las levaduras son activadores, moduladores y fortificadores del sistema inmune en diversos organismos por la presencia de β-glucanos, mananooligosacáridos y otros componentes de la pared celular (ZhenMing et al., 2010) que estimulan la proliferación de hemocitos como en L. vannamei (Campa-Córdova et al., 2010).

Las variaciones en el NTH de los crustáceos dependen del sexo, temporada, condiciones ambientales, enfermedades (Johansson et al., 2000; Gelibolu et al., 2009; Pacheco et al., 2012) y de la respuesta inmune de cada especie de crustáceo (Song y Hsieh, 1994; Matozzo y Marin, 2010). En C. caementarius, el NTH máximo fue de 134.75 x 105 cél/ml estimulado con 6% de levadura en la dieta. Alto NTH se registra en Eriocheir sinensis en machos y en hembras (Lv et al., 2014) y en P. monodon (van de Braak, 2002). En cambio, bajo NTH se informa en Panulirus argus (Li y Shields, 2007), Carcinus aestuarii (Matozzo y Marin, 2010) y C. sapidus (Gelibolu et al., 2009).

Las diferentes proporciones de levadura en la dieta ocasionaron en C. caementarius incremento relativo de los HSG (de 73 a 86%) en relación con el basal (54%); en cambio, disminuyeron los HG (de 25 a 11%) y HH (de 2 a 0.5%) con relación al valor basal (28 y 14%, respectivamente). Esto demuestra que la levadura estimula principalmente la proliferación de HSG, lo cual es necesario para el camarón, toda vez que este tipo de hemocitos participa en fagocitosis, como lo sucedido en M. rosenbergii y M. acanthurus (Gargioni y Barracco, 1998). En P. leniusculus, los HSG constituyen el 65% de las células (Lin y Söderhäll, 2011). En P. argus, los HSG representan el 58%, los HG el 27% y los HH el 15% (Li y Shields, 2007), similar a Procambarus clarkii (Din et al., 2012).

La dieta con 6% de levadura fue la única que estimuló la proliferación de HG (31.44 x 105 cél/ ml) y HSG (102.44 x 105 cél/ml) n C. caementarius durante 28 días de cultivo, en relación con 3% de levadura (23 x 105 cél/ml), 9 y 12% de levadura (57 x 105 cél/ ml) (p<0.05). Estos resultados indican que 6% de levadura sería la máxima concentración para emplear en la dieta de C. caementarius para estimular la proliferación de los HG y HSG.

Los HH en C. caementarius de todos los tratamientos fluctuaron en el tiempo con respecto al basal (1.56 x 105 cél/ml), pero disminuyeron hasta ~0.40 x 105 cél/ml, aunque estos valores fueron más altos que lo informado por Cornejo et al. (2015) de ~0.11 x 105 cél/ml. Esta variación de los HH durante el tiempo de cultivo podría ser ocasionado por alguna enfermedad orgánica o alguna infección que no fue perceptible a simple vista y que explicaría el incremento abrupto de los HH que se observó a los siete días con 6% de levadura y a los 14 días con 3 y 12% de levadura en la dieta. Esto se sustenta por el hecho de que los HH de los crustáceos decápodos tienen capacidad fagocítica y participan en la coagulación (Raa, 2000; Johansson et al., 2000; Montesdeoca et al., 2002; Lv et al., 2014).

La variación de los HA en C. caementarius alimentado hasta con 9% de levadura fue similar con el basal (0.31 x 105 cél/ml) y a lo reportado (0.28 x 105 cél/ml) por Cornejo et al. (2015). En cambio, el incremento abrupto de los HA observado a los 21 y 28 días de cultivo solo en aquellos alimentados con 12% de levadura indicaría alteraciones en la hematopoyesis por exceso de levadura que debe haber afectado el estado fisiológico e inmunológico de los camarones. En L. vannamei, la alta concentración de HA se relaciona con deficiente estado inmunitario, baja capacidad de reemplazo por hemocitos nuevos y libre circulación de células inmunitarias desgastadas o apoptóticas (Maldonado, 2003).

La disminución del NTH, HG y HSG en camarones machos C. caementarius alimentados con 9 y 12% de levadura desde los 21 días de cultivo es evidencia de que ambas concentraciones de levadura fueron elevadas que afectaron la proliferación de hemocitos y ocasionaron el incremento de los HA. Según Chang et al. (2000), una sobredosis de levadura en P. monodon causa fatiga inmune. En cambio, el 6% de levadura en la dieta ocasionó en C. caementarius mayor incremento del NTH, HSG y disminución de HA con relación a lo informado por Cornejo et al. (2015) con 3% de levadura. Sin embargo, es conveniente complementar dichos resultados con otros parámetros inmunológicos y, además, realizar el desafío con bacterias patógenas.

CONCLUSIONES

  • La dieta con 6% de levadura incrementó (p<0.05) el número total de hemocitos y los hemocitos granulocitos y semigranulocitos de camarones machos de C. caementarius, durante 28 días de cultivo.

  • Las dietas con 9 y 12% de levadura afectaron (p<0.05) la proliferación de hemocitos totales y diferenciales en los camarones machos de C. caementarius.

 

LITERATURA CITADA

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Recibido: 20 de diciembre de 2018

Aceptado para publicación: 12 de julio de 2019

 

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