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TRABAJOS ORIGINALES Perfiles genéticos (RFLP-IS6110) y resistencia a drogas en aislamientos de M. tuberculosis de pacientes internados en un hospital referencial del Callao, Perú.
Christian Baldeviano V1; Neyda Quispe T1; César Bonilla A2; Dauma Gastiaburu3; José Pro C3; Luis F. Llanos–Zavalaga1. 1 Grupo Multifuncional de Tuberculosis. Centro Nacional de Salud Pública, Instituto Nacional de Salud. Lima, Perú.
RESUMEN Objetivo: evaluar la frecuencia y el agrupamiento de los perfiles genéticos (RFLP-IS6110) y los niveles de resistencia a drogas en aislamientos de M. tuberculosis de pacientes hospitalizados con tuberculosis pulmonar frotis positivo (TBP-FP) en un hospital general de la provincia del Callao, Lima, Perú. Materiales y métodos: se incluyeron pacientes con TBP-FP hospitalizados en el Hospital Nacional Daniel A. Carrión entre agosto de 2000 y febrero de 2001. Se realizó la prueba de sensibilidad a las cuatro drogas de primera linea (INH, RIF, SM, EMB) por el método de las proporciones y la genotipificación mediante el método estándar de RFLP-IS6110. Se recolectó la información de los pacientes de los registros de laboratorio e historias clínicas. Resultados: en 74 aislamientos, el número de bandas en los perfiles genéticos variaron entre 2 y 16, 4 perfiles (5,5%) mostraron menos de 5 bandas. En total 50 perfiles genéticos fueron obtenidos de 70 pacientes. 34 aislamientos (48,6 %) se agruparon en 14 “clusters” y 36 tuvieron ocurrencia única. La resistencia a drogas en pacientes nunca y antes tratados fue 45,2% y 71,1%, respectivamente. La multidrogorresistencia fue 16,1% y 36,8%, respectivamente. 10 de los 14 “clusters” incluyeron por lo menos un aislamiento resistente y un cluster agrupó 6 aislamientos resistentes. Conclusiones: No se encontró evidencia de algún genotipo predominante en la población estudiada. Sin embargo, se observaron «clusters» agrupando pacientes con TB sensible y resistente. Nuestros resultados sugieren que existen genotipos asociados a resistencia lo cual indicaría transmisión activa de cepas resistentes en la provincia del Callao. Es necesario llevar a cabo un estudio poblacional para confirmar nuestros resultados.
ABSTRACT Objective: To assess the frequency and clustering of DNA fingerprinting (RFLP-IS6110), and to determine levels of drug-resistance among M. tuberculosis isolates from smear-positive pulmonary tuberculosis patients (SP-PTB) from a general hospital in Callao. Materials and methods: Patients with SP-PTB hospitalized in the Hospital Nacional Daniel A Carrión from August 2000 to February 2001were included in the study. Drug-susceptibilty testing to the four first-line drugs (INH, RIF, SM, EMB) was performed using the proportion method, and DNA fingerprinting analysis was performed using the standard IS6110-RFLP technique. Patient information was collected from clinical and laboratory records. Results: From 74 isolates, the number of IS6110-bands varied from 2 to 16, 4 isolates (5,5%) showed less than 5 bands. Overall, 50 DNA fingerprinting profiles were observed in 70 patients. 34 isolates (48,6 %) were grouped in 14 clusters and 36 isolates were isolated ocurrences. Drug resistance in never treated and previoulsy treated patients was 45,2% and 71,1%, respectively. Multidrug-resistance was 16,1% and 36,8%, respectively. 10 out of 14 clusters had at least one drug-resistant isolate. One cluster involved 6 drug-resistant isolates. Conclusion: No evidence of clonal spread of a particular strain was observed. However, we found clusters grouping drug-resistant and drug-susceptible patients. Our results suggests that there are genotypes associated with drug resistance, which could indicates ongoing transmission of drug-resistant M. tuberculosis strains in Callao. A population-based study is necessary to confirm our results.
INTRODUCCIÓN La tuberculosis (TB) es responsable de 3 millones de muertes al año y de la presentación de aproximadamente 8 millones de nuevos casos; se calcula que un tercio de la población mundial se encuentra infectado con esta enfermedad 1,2 . La situación es aún más dramática en países en vías de desarrollo, en los cuales ocurren 95 a 98% de los casos y las muertes por esta enfermedad 3 . En el Perú, luego de la implementación de la terapia corta directamente suministrada (DOTS/TAES), los niveles de incidencia han disminuido de manera importante; aunque todavía se encuentre entre las más alta en América. En el año 2000 se diagnosticaron un total de 39 918 pacientes con TB en todas sus formas, 58% de los cuales fueron reportados sólo en Lima y Callao 4 . Además, de acuerdo con el último estudio nacional de vigilancia, los niveles de resistencia a drogas antituberculosas se han incrementado. En este contexto, es de vital importancia la búsqueda de nuevas herramientas experimentales para delinear mejor las estrategias de intervención y prevenir la transmisión de la tuberculosis en la comunidad.
MATERIALES Y MÉTODOS POBLACIÓN DE PACIENTES Y AISLAMIENTOS CLÍNICOS.
RESULTADOS De los 90 pacientes reclutados para el presente estudio, 9 fueron excluidos por presentar cultivo negativo. Los 81 restantes fueron elegibles para la prueba de sensibilidad y el análisis de RFLP-IS6110. Sin embargo, 12 fueron excluidos para este análisis porque en 7 se obtuvo ADN genómico degradado y en 4 el perfil genético mostró menos de 5 copias de IS6110 (población final = 70). Los 4 perfiles genéticos con menos de 5 bandas IS6110 fueron incluidos en el dendrograma, pero fueron posteriormente excluidos del análisis de agrupamiento. Por otro lado, únicamente en 69 de 81 (85,2%) pacientes se realizó la prueba de sensibilidad porque en 7 pacientes se obtuvieron menos de 10 colonias (criterio de exclusión para prueba de sensibilidad)11 y 5 de los cultivos se contaminaron (población final = 69). Todos los paciente provinieron de los distritos de Callao, La Perla, Bellavista, y Ventanilla (7 pacientes fueron posteriormente transferidos fuera del Callao). Las muestras clínicas procesadas fueron: esputo en su mayoría (77), y aspirado bronquial (4). La edad de los pacientes varió entre 13 y 88 (34,7 ±15,2). 51,8% de los pacientes tuvieron entre 20 y 33 años. La mayoría de los pacientes fueron del sexo masculino (masculino / femenino = 1,18:1). 40 pacientes (49,4%) recibieron tratamiento antituberculoso por más de 3 semanas, 9 pacientes (11,1 %) tuvieron un diagnóstico positivo para VIH, 27 (33,3%) fueron VIH negativo y en 45 (55,6%) pacientes no se encontró registros de prueba para diagnóstico de infección por VIH. Se encontró evidencia de historia previa de TB en 36 pacientes (44,4 %).
La moda fue de 8. No se observó ningún aislamiento sin la secuencia de inserción IS6110; sin embargo, 4 aislamientos (5,4%) tuvieron menos de 5 segmentos de inserción IS6110 y fueron incluidos en la elaboración del dendrograma; pero no fueron considerados en el análisis de agrupamiento. En total 50 perfiles genéticos RFLP-IS6110 diferentes fueron obtenidos de 70 aislamientos. 34 (48,6 %) perfiles genéticos se agruparon en 14 “clusters”, y 36 perfiles RFLP-IS6110 tuvieron ocurrencia única (Figura Nº 2).
Los tres “clusters” más grandes estuvieron conformados por uno que agrupó 6 pacientes (cluster I), y dos que agruparon 3 pacientes (cluster II y III). Los 11 “clusters” restantes agruparon únicamente a dos pacientes (cluster IV, V, ..., XIV). El cluster I estuvo caracterizado por un perfil de 9 bandas (similitud = 92,7%), 4 fueron nunca tratados y dos antes tratados, dos de los pacientes eran positivo para VIH. El cluster II agrupó pacientes con aislamientos que presentaron un perfil genético de 6 y 7 bandas (similitud = 92,3%) e incluyeron 2 pacientes nunca tratados. El cluster III estuvo caracterizado por perfiles de 6 y 7 bandas (similitud = 90,8%) y los tres pacientes que lo conformaron fueron nunca tratados. 84,3 % (59/70) de los pacientes estudiados mostraron aislamientos cuyo perfil genético RFLP-IS6110 presentó mayor o igual a 75% de similitud (Figura N°2, 3 y Tabla Nº 1).
DISCUSIÓN En el Perú, luego de más de 10 años del establecimiento de la estrategia de tratamiento acortado directamente supervisado (DOTS/TAES) recomendado por la Organización Mundial de la Salud, la tasa de notificación de casos y la incidencia de tuberculosis está disminuyendo en los últimos años 14 . Sin embargo, como en muchos países del mundo, la emergencia de la resistencia a drogas, y en particular de la multidrogorresistencia (MDR) es una grave amenaza para el control de la TB. El último estudio nacional de vigilancia mostró un incremento en la resistencia global primaria y la multidrogorresistencia primaria 15 .
AGRADECIMIENTOS Agradecemos al personal técnico del Laboratorio Nacional de Referencia de Micobacterias, al Sr. Lino Gómez y al Sr. Hugo Miranda. Al personal técnico del Laboratorio Central del Hospital Nacional Daniel A. Carrión (HNDAC) y al equipo de enfermeras del Programa de Control de Tuberculosis del HNDAC. REFERENCIAS 1. World Health Organization. Global Tuberculosis Control. WHO Report 2001. 2. Dye C, Scheele S, Dolin P, Pathania V, Raviglioni MC. Concensus Statement Global burden of tuberculosis, estimeted incidence, prevalence, and mortality by country. WHO Global Surveillance and Monitoring Project. JAMA 1999; 282(7): 677- 86. 3. Zumla A, Grange JM. Doing something about tuberculosis. BMJ 1999; 318 (7189):956. 4. Ministerio de Salud. Tuberculosis en el Perú. Informe 2000. Dirección General de Salud de las Personas / Programa de Control de Enfermedades Transmisibles / Control de Tuberculosis. Informe 2000. 322pp. 5. Kato-Maeda M, Small PM. How molecular epidemiology has changed what we know about tuberculosis. West J Med 2000; 172(4):256-9. 6. Van Soolingen. Molecular epidemiology of tuberculosis and other mycobacterial infections: main methodologies and achievements. J Inter Med 2001; 249(1): 1-26. 7. Van Embden JD, Cave MD, Crawford JT, Dale JW, Eisenach KD, Gicquel B, et al. Strain identification of Mycobacterium tuberculosis by DNA fingerprinting: recommendations for a standardized methodology. J Clin Microbiol. 1993; 31(2): 406-9. 8. Small PM, Hopewell PC, Singh SP, Paz A, Parsonnet J, Ruston DC, et al. The epidemiology of tuberculosis in San Francisco. A population-based study using conventional and molecular methods. N Engl J Med. 1994; 330(24):1703-9. 9. Alland D, Kalkut GE, Moss AR, McAdam RA, Hahn JA, Bosworth W, et al. Transmission of tuberculosis in New York City. An analysis by DNA fingerprinting and conventional epidemiologic methods. N Engl J Med. 1994; 330(24): 1710-6. 10. Barnes PF, Yang Z, Pogoda JM, Preston-Martin S, Jones BE, Otaya M, et al. Foci of tuberculosis transmission in central Los Angeles. Am J Respir Crit Care Med. 1999; 159(4 Pt 1): 1081-6. 11. Instituto Nacional de Salud. Manual de normas y procedimientos en bacteriología de tuberculosis. Lima: INS; 1995. Serie de Normas Técnicas N10. 12. Van Soolingen D, De Hass PE, Hermans PW, van Embden JD. RFLP analysis of Mycobacteria. In: RFLP analysis of Mycobacteria. Bilthoven, The Netherlands, National Institute of Public Heath and Environmental Protection 1995, 63 pp. 13. Soini H, Pan X, Teeter L, Musser JM, Graviss EA. Transmission dynamics and molecular characterization of Mycobacterium tuberculosis isolates with low copy numbers of IS6110. J Clin Microbiol. 2001; 39(1): 217-21. 14. Suarez PG, Watt CJ, Alarcon E, Portocarrero J, Zavala D, Canales R, et al. The dynamics of tuberculosis in response to 10 years of intensive control effort in Peru. J Infect Dis 2001; 184(4): 473-8. 15. Ministerio de Salud. Vigilancia de la resistencia a los medicamentos antituberculosos en el Perú. 1999. En: Informe 2000. Dirección General de Salud de las Personas / Programa de Control de Enfermedades Transmisibles / Control de Tuberculosis. MINSA 2000. 16. Yeh RW, Ponce de Leon A, Agasino CB, Hahn JA, Daley CL, Hopewell PC, et al. Stability of Mycobacterium tuberculosis DNA genotypes. J Infect Dis 1998; 177(4): 1107- 11. 17. Alito A, Morcillo N, Scipioni S, Dolmann A, Romano MI, Cataldi A, et al. The IS6110 restriction fragment length polymorphism in particular multidrug- resistant Mycobacterium tuberculosis strains may evolve too fast for reliable use in outbreak investigation. J Clin Microbiol 1999; 37(3): 788-91. 18. Cave MD, Eisenach KD, Templeton G, Salfinger M, Mazurek G, Bates JH. Stability of DNA fingerprint pattern produced with IS6110 in strains of Mycobacterium tuberculosis. J Clin Microbiol 1994; 32(1): 262-6. 19. Ferrazoli L, Palaci M, Marques LR, Jamal LF, Afiune JB, Chimara E, et al. Transmission of tuberculosis in an endemic urban setting in Brazil. Int J Tuberc Lung Dis 2000; 4(1): 18-25 20. Van Deutekom H, Gerritsen JJ, van Soolingen D, van Ameijden EJ, van Embden JD, Coutinho RA. A molecular epidemiological approach to studying the transmission of tuberculosis in Amsterdam. Clin Infect Dis 1997; 25(5): 1071–7. 21. Warren R, Richardson M, van der Spuy G, Victor T, Sampson S, Beyers N, et al. DNA fingerprinting and molecular epidemiology of tuberculosis: use and interpretation in an epidemic setting. Electrophoresis 1999; 20(8): 1807-12. 22. Murray M. Sampling bias in the molecular epidemiology of tuberculosis. Emerg Infect Dis 2002; 8(4): 363-9. 23. Glynn JR, Vynnycky E, Fine PE. Influence of sampling on estimates of clustering and recent transmission of Mycobacterium tuberculosis derived from DNA fingerprinting techniques. Am J Epidemiol 1999; 149(4): 366-71. 24. Glynn JR, Whiteley J, Bifani PJ, Kremer K, van Soolingen D. Worldwide occurrence of Beijing/W strains of Mycobacterium tuberculosis: a systematic review. Emerg Infect Dis 2002; 8(8): 843-9. 25. Kruuner A, Hoffner SE, Sillastu H, Danilovits M, Levina K, Svenson SB, et al. Spread of drug-resistant pulmonary tuberculosis in Estonia. J Clin Microbiol 2001; 39(9): 3339-45. 26 Bifani PJ, Mathema B, Liu Z, Moghazeh SL, Shopsin B, Tempalski B, et al. Identification of a W variant outbreak of Mycobacterium tuberculosis via population- based molecular epidemiology. JAMA 1999; 282(24): 2321-7. 27. Ritacco V, Di Lonardo M, Reniero A, Ambroggi M, Barrera L, Dambrosi A, et al. Nosocomial spread of human immunodeficiency virus-related multidrug- resistant tuberculosis in Buenos Aires. J Infect Dis 1997; 176(3): 637-42. 28. Fandinho F, Kritski A, Hofer C, Conde H Jr, Ferreira R, Silva M, et al. Drug resistance patterns among hospitalised tuberculous patients in Rio de Janeiro, Brazil, 1993-1994. Mem Inst Oswaldo Cruz 1999; 94(4): 543-7. 29. Baptista IM, Oelemann MC, Opromolla DV, Suffys PN. Drug resistance and genotypes of strains of Mycobacterium tuberculosis isolated from human immunodeficiency virus-infected and non-infected tuberculosis patients in Bauru, Sao Paulo, Brazil. Mem Inst Oswaldo Cruz 2002; 97(8): 1147-52. 30. Harrow EM, Rangel JM, Arriega JM, Cohen I, Regil Ruiz MI, DeRiemer K, et al. Epidemiology and clinical consequences of drug-resistant tuberculosis in a Guatemalan hospital. Chest 1998; 113(6): 1452-8. 31. Willingham FF, Schmitz TL, Contreras M, Kalangi SE, Vivar AM, Caviedes L, et al. Hospital control and multidrug-resistant pulmonary tuberculosis in female patients, Lima, Perú. Emerg Infect Dis 2001; 7(1): 123-7. Correspondencia: Christian Baldeviano Vidalón. Centro Nacional de Salud Pública. Instituto Nacional de Salud. Dirección: Calle Cápac Yupanqui 1400. Lima 11, Perú.
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