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INTRODUCCIÓN
La mashua (Tropaoelum tuberosum) es un tubérculo de uso milenario y autóctono con un valor económico, alimenticio y medicinal, utilizado por los pobladores alto andinos1. Se han aislado componentes de la "mashua” con propiedades como: antibióticos, nematicidas, diuréticos, insecticidas, además de los efectos encontrados sobre la testosterona en machos y estrógenos en las hembras. Mucho de los usos medicinales de la mashua están relacionados a la presencia de isothiocianatos y glucosinolatos2. En los últimos años, se han venido mostrando que los isothiocianatos (compuestos organosulforados) inducen apoptosis en varias líneas celulares cancerígenas en ratones3y retardaron la progresión del ciclo celular4. Estas características han sido relacionadas a la unión covalente a proteínas celulares5y a la inhibición de enzimas con actividad y detoxificación carcinogénica, entre otros mecanismos que aún no han sido descritos6; por otra parte, estudios hechos en ratas con dietas con mashua mostraron un 45% de disminución de los niveles de testosterona/dihidrotestosterona7. No existen antecedentes de efectos de mashua sobre la expresión de genes involucrados en la espermatogénesis; por ello, en el presente estudio, se evaluó la expresión génica de algunas proteínas importantes en el proceso de espermatogénesis, las cuales fueron cytochrome P450 17α-hydroxylase/17,20-lyase CYP17, que es muy importante para la biosíntesis de cortisol y esteroides sexuales8;, por ello, será tomado como marcador de la biosíntesis de la testosterona; la proteína reguladora de esteroidogenesis aguda es un gen regulado por los receptores de andrógeno9; la ciclina es una proteína muy importante para la división celular y la protamina en el proceso de la espermatogénesis. El objetivo del presente trabajo es evaluar el efecto del extracto acuoso de T. tuberosum sobre los parámetros morfofuncionales básicos de los espermatozoides: motilidad, morfología y concentración, y relacionarlos al efecto sobre la expresión de en algunos genes involucrados en la espermatogénesis.
MÉTODOS
Diseño y área de estudio
Estudio experimental preclínico de casos y controles, en el área de biología experimental.
Población y muestra
La muestra estuvo conformada por 20 ratones machos (Mus musculus) de la cepa albina Swiss Rockefeller de 6-7 semanas de edad obtenidos del bioterio del Instituto Nacional de Salud, en Lima-Perú; el grupo casos (experimental) lo conformó 10 ratones, a quienes se les administró extracto acuoso mediante sonda nasogástrica N.°18 (Fisher Scientific, Pittsburgh, PA, USA), en una concentración de 1000 mg/kg de peso corporal durante 21 días. Los especímenes se mantuvieron en condiciones de bioterio (temperatura ambiental 22 - 24º C, 14 h luz: 10 h oscuridad), con acceso libre a una dieta con pellets (Purina, Perú) y aguaad libitum.
Plantas
Se adquirieron tubérculos de mashua en mercados locales de Huancayo, en Perú. En el laboratorio, las plantas fueron certificadas por el Departamento de Botánica de la Universidad Nacional Mayor de San Marcos (UNMSM).
Químicos
Alcohol etílico 70º, agua destilada, solución PBS (Phosphate buffer saline - Sigma), Kit DNA-freeTM (Ambion), SYBR Green I, trizol.
Obtención del extracto
El tubérculo fue pesado y licuado, inmediatamente macerado con alcohol de 70º por dos días; posteriormente, se separó la fase líquida de la parte sólida. La primera fue llevada a la estufa para evaporar el alcohol y se obtuvo una pasta que fue considerada como compuesto patrón.
Diseño experimental
Los ratones se distribuyeron en cuatro grupos de tratamientos: uno fue grupo control negativo (CN), que fue tratado con agua destilada y los grupos tratamiento (T7, T14 y T21), a los que les administró el extracto acuoso (20%) de T. tuberosum por vía oral por 7, 14 y 21 días, respectivamente. Se registró el peso total, en g, de los ratones al inicio del tratamiento y el día de la evaluación.
Después de cada tratamiento, los ratones fueron sacrificados por dislocación cervical y se procedió a obtener las muestras: un testículo y un epidídimo fueron colocados en trizol dentro de un criovial (100 mg/ml) y guardado a -196º C en nitrógeno líquido hasta la extracción de ARN; a partir del segundo epidídimo, se obtuvieron los espermatozoides para medir los parámetros espermáticos (concentración espermática y motilidad)según OMS (2010). La extracción del ARN se realizó mediante el trizol, según el protocolo para aislamiento de ARN de Invitrogen Cat. N.º 15596-18. Una vez obtenido el ARN, se procedió a remover el ADN contaminante mediante el uso del Kit DNA-freeTM de Ambion, según el protocolo descrito en el Cat. N.º AM 1906. A partir del ARN aislado libre de ADN contaminante, se procedió a la síntesis del cADN, para lo cual se empleó el RT PCR, protocolo descrito en Cat. N.º 18080-051. La cuantificación se realizó por RT-PCR, en tiempo real, con el sistema LightCycler® 2.0 de Roche Applied Science, en donde el producto de PCR es detectado y medido por la señal fluorescente del SYBR Green I. El principio de esto es que el SYBR Green I se une al surco menor de la doble hélice del ADN y se intercala en la hélice del ADN10; en la solución, el colorante exhibe una fluorescencia muy baja, sin embargo, la fluorescencia (a 530 nm de longitud de onda) es mejorada por la unión al ADN. Por ello, durante la PCR, el incremento de la fluorescencia del SYBR Green I es directamente proporcional a la cantidad de ADN doble cadena generado, y dicha emisión es detectada por el filtro óptico de sistema LightCycler® 2.0.
La cuantificación fue relativa al housekeeping, la expresión del gen de la beta actina, la cual teóricamente es expresada de manera constante en el tejido testicular del ratón, lo cual sirvió como punto de referencia para medir la expresión de los genes target. Esta medición relativa es dada por la proporción de la expresión de los genes target sobre la expresión del gen housekeeping, en los grupos tratados en los periodos diferentes con el extracto acuoso de mashua en comparación con el grupo control.
Análisis estadístico
Se comprobó homocedasticidad (igualdad de varianzas) de los datos mediante el Test de Levene. Para comprobar si los datos obtenidos de las distintas variables a evaluar se distribuían normalmente, se realizó la prueba de Shapiro-Wilk. Cuando la variable a evaluar presentaba distribución normal, se procedió a comparar las medias con T-student; en caso contrario, se aplicó U de Mann-Whitney para pruebas no paramétricas. Los resultados fueron expresados como media ± EE (error estándar). Se usó el programa estadístico SPSS, versión 17.00, y se consideró el nivel de significancia de p≤ 0.05.
Aspectos éticos
El cuidado y manejo de los animales se realizó de acuerdo con las pautas éticas de nuestra institución y del Consejo Nacional de Investigación para el cuidado y uso de animales de laboratorio11.
RESULTADOS
Peso corporal y órganos reproductivos
No se observaron diferencias significativas en el incremento del peso corporal, peso de los testículos, epidídimos y próstata (p>0,05) entre los grupos analizados. Los resultados se resumen en la tabla 1.
Tabla 1. Diferencias de pesos corporal y de órganos reproductivos inicial y final (g).
| Parámetros | Grupo Control | Mashua 7 días | Mashua 14 días | Mashua 21 días |
| N | 5 | 5 | 5 | 5 |
| DifWs | 8.27 ± 1.500 | 6.39 ± 1.180 | 8.7 ± 1.630 | 9.02 ± 1.350 |
| Dif WTestis | 0.100 ±.100 | 0.091 ± 0.116 | 0.107 ± 0.120 | 0.0987 ± 0.130 |
| DifWepid | 0.037 ± 0.067 | 0.033 ± 0.064 | 0.0382 ± 0.056 | 0.035 ± 0.071 |
| Wprost | 0.0078 ± 0.043 | 0.0072 ± 0.036 | 0.0073 ± 0.048 | 0.0071 ± 0.042 |
Grupo Control 0 % TT y Grupos Tratamiento 20% TT. Media ± EE; analizado por Tt-sStudent. DifWs: peso corporal, WTestis: peso de los testículos Wepid: peso de los epidídimos y, Wprost: peso de la próstata
Tabla 2. Movilidad y concentración espermática.
| Parámtros seminales | Grupos de control | Mashua 7 días | Mashua 14 días | Mashua 21 días |
| Mot A | 38.095 ± 2.057 | 34.976 ± 1.840 | 30.528 ± 1.936 | 25.017 ± 3.156 * |
| Mot B | 14.856 ± 2.132 | 15.978 ± 2.080 | 20.573 ± 2.418 | 19.702 ± 2.879 |
| Mot C | 9.473 ± 1.673 | 9.57 ± 1.880 | 7.661 ± 1.875 | 5.167 ± 1.561 |
| Mot D | 37.576 ± 2.298 | 39.475 ± 2.577 | 41.238 ± 2.577 | 39.001 ± 3.868 |
| Concent Sps | 25.06 ± 2.260 | 19.11 ± 2.120 | 18.555 ± 1.539 | 13.455 ± 2.622 * |
Grupo Control 0% TT y grupos tratamiento 20% TT. Media ± EE; analizado por T-student. Mot A: motilidad tipo A, Mot B: motilidad tipo B Mot C: motilidad tipo C, Mot D: motilidad tipo D Concent Sps: Conteo de espermatozoides. (*) (p <0.05) ANOVA
Los resultados de cuantificación de expresión génica de dos de cuatro genes (cytochrome P450 17α-hydroxylase/17,20-lyase, ciclina) dieron como resultado una diferencia no significativa en comparación con el grupo control en la cuantificación relativa a la expresión de beta actina (datos no mostrados).
DISCUSIÓN
El presente trabajo intenta investigar los efectos de una dosis única de Tropaeolum tuberosum o mashua en la calidad espermática y expresión génica durante la espermatogénesis de ratón; se consideraron los antecedentes antiandrogénicos de la mashua2,12Por los resultados mostrados, no hay efectos tóxico sistémico sobre el peso corporal y órganos reproductivos.
El efecto del extracto acuoso de mashua disminuye la concentración espermática en los tres grupos de tratamiento a comparación del grupo control y es estadísticamente significativa para el de 21 días de tratamiento; en el parámetro de motilidad, también se observa una disminución de la motilidad progresiva y es de mayor incidencia en aquellos tratados por 21 días, en donde se observó un número mayor de espermatozoides inmaduros presencia de gotas citoplasmáticas, lo que podría explicar la baja en la motilidad progresiva. Estos efectos no estarían relacionados a un cambio en la expresión de genes involucrados en la espermatogénesis, ya que no se observó diferencias en la expresión de estos genes en comparación con el grupo control. Esto indicaría, por tanto, que el efecto de la mashua sobre la fisiología reproductiva tendría más bien un efecto postranscripcional, en el que estaría afectando a las proteínas que tienen un papel importante en este proceso, posiblemente por la acción de los compuestos organofosforados como isothiocianatos presentes en la mashua por la capacidad de estos de unirse de manera covalente a las proteínas e inactivando las actividades enzimáticas3,13-15.
Sin embargo, se requiere un mayor estudio al respecto; quizá la ampliación del rango de genes a estudiar, ya que si algunas proteínas son afectadas, podrían haber algunas relacionadas a factores de transcripción y afectar, así, la expresión de otros genes que estén directa o indirectamente relacionados al proceso de la espermatogénesis; así quizás esto podría explicar el efecto sobre la maduración de los espermatozoides observado en el trabajo, probablemente relacionado los receptores de estrógenos a nivel de epidídimo.
