Recolección

La colección de especímenes de thrips se realizó en Piura, Sullana, distritos de Querecotillo (Latitud: 4°50’17’’S y Longitud: 80°38’53’’W), Salitral

(Latitud: 4°51’40’’S y Longitud: 80°41’02’’W) y el centro poblado de Huangalá (Latitud 4°50’27’’ S y Longitud 80°36’07’’W) (Figura 1).

La fase de laboratorio se realizó en Laboratorio de Entomología de la Facultad de Agronomía de la Universidad Nacional de Piura.

Por el daño conocido como “Mancha Roja” que presenta tanto en hijuelos, pseudotallos y racimas (^{Bisane et al., 2017}; ^{Orellana, 2007}; ^{Padmanaban & Mani, 2020}; ^{Patil et al., 2015}); se realizaron capturas en estas zonas específicas del cultivo. Se encontraron especies de thrips diferentes en la cucula y la racima de banano, se reportan a un complejo de insectos como los causantes de la “Mancha Roja”; para descartar tal idea se diseñó el ensayo de alimentación. Se recolectaron especí-menes vivos de thrips encontrados en racima con ayuda de un pincel cero previamente humedecido y puestos en frascos con su etiqueta (^{Mound & Pitkin, 1972}).

En pseudotallo e hijuelos, se realizaron capturas en áreas donde se había producido el daño de veteado de “Mancha Roja” (^{McGuire & Northfield, 2021}), como se aprecia en la Figura 2B y 2C, de forma manual utilizando un pincel húmedo fino. Se tomaron los thrips y se introdujeron en los tubos de captura. Se empleó la solución AGA (Alcohol etílico al 60%, glicerina y ácido acético en la proporción 6:1:1 respectivamente) (^{Mound & Pitkin, 1972}) como conservante para colocar los especímenes de thrips muertos previo a realizar en laboratorio los montajes microscópicos, para su identificación taxómica.

Prueba de alimentación

Dedos limpios de banano, previamente desinfecta-dos, de la última semana de desarrollo fueron amarrados entre sí con una madeja para colgarlos por el pedúnculo en un frasco (de 25 cm de altura y de 24,5 cm de diámetro mayor y 19,6 de diámetro menor) con flujo constante de aire, suspendidos en posición vertical. Se introdujeron los thrips de los especímenes en estudio colectados (estos especí-menes se capturaron vivos empleando el mismo método con el que fueron introducidos en las manillas del ensayo de alimentación), en campo, con un pincel fino N° 0 humedecido previamente. Se dejó que pongan sus ovoposiciones y nazca la nueva generación, se tomó en cuenta una manilla de banano como control para el ensayo. El espécimen que causó una mancha en la cáscara, del banano, de aspecto oxidado característico de color rojo oscuro a café oscuro en los dedos de banano se identificó como el thrips causante de “Mancha Roja” (^{Bisane et al., 2018}; ^{Padmanaban & Mani, 2022}: ^{Poorani & Thanigairaj, 2019}).

Identificación taxonómica

Para el examen al microscopio se procedió a macerar, deshidratar y montar en bálsamo de Canadá los especímenes en estudio; ^{Mound & Kibby (1998}) proporciona una exposición deta-llada de esta metodología. Para la identificación de las especies de thrips mediante el examen morfológico se utilizaron especímenes adultos, tomando en cuenta las claves descritas por ^{Palmer et al. (1989}), ^{Goldarazena (1996}), Mound & Marullo (1996).

Prueba de alimentación

Durante el periodo de alimentación se identificó que una de las especies introducidas fue el thrips del género Frankliniella parvula, tanto adultos como ninfas, los que después de 2 semanas terminaron muriendo. ^{Kuniyoshi (2013}), en campos de banano, encontró a esta especie en la inflorescencia y Barreto et al. (2022), reportan que en frutos tiernos de banano colocan sus huevos. Esta especie, se encuentra en la planta hasta que la inflorescencia es cortada. Al no tener acceso a este alimento en los frascos murieron. Solo quedó la especie que causó el daño entre dedos conocido como “Mancha Roja”, al que identificamos como Chaetanaphothrips signipennis (Bagnall) (^{De López, 2019}; ^{Mound et al., 2022}). Esto confirma que el daño no era causado por un complejo como se informan en la literatura local (Vilela et al., 2007), sino que es causado, en el caso del Valle del Chira, por esta especie.

Identificación

^{Palmer et al. (1989}) informan que las especies de Chaetanaphothrips sp. son de colores claros con algunas zonas oscuras; principalmente sobre las alas. Los adultos de C. signipennis (Bagnall) exhiben una tonalidad parda dorado a crema (Figuras 2A, 3A y 3B) y en las alas se aprecian franjas transversales de color negro. La hembra es más grande que el macho, es decir, esta especie presenta dimorfismo sexual y su identificación taxonómica resulta un tanto difícil en vista de su tamaño pequeño (1,4 - 1,7 mm) y su parecido con otras especies amarillas o predominantemente amarillas de Chaetanaphothrips sp. (^{Orellana, 2007}). Estas características son las mismas que fueron observadas por ^{Valladolid et al. (2020}) para Chaetanaphothrips signipennis.

^{Palmer et al. (1989}) mencionan que C. signipennis tiene 8 segmentos antenales, ^{Mound & Marullo (1996}) refieren que los segmentos III y IV tienen sensores delgados y bifurcados, características que se aprecian en la antena de la especie en estudio, como se observa en las figuras 4A, 4B y 4C. Estas características son las mismas que observaron ^{Valladolid et al. (2020}) para Chaetanaphothrips signipennis.

^{Palmer et al. (1989}) encuentran que C. signipennis presenta setas ocelares en el par I, a diferencia de C. orchidii. La Figura 5A presenta la cabeza de la especie en estudio, donde se aprecian las características antes mencionadas.

Entre tanto, ^{Palmer et al. (1989}) indica que C. signipennis presenta en el Pronotum un par de setas posteroangulares internas largas y setas posteroangulares externas discales como se observa en la figura 5B, el Pronotum de la especie en estudio presenta la característica reportada por Palmer para esta especie.

^{Mound & Marullo (1996}) mencionan que el ala anterior es de color marrón pálido con bandas cruzadas en la base y en el medio. Se observa esta coloración en la especie en estudio (Figura 6). También indican con respecto al ala anterior, que la primera vena tiene tres setas sobre la media distal, mientras que la segunda vena presenta tres a cuatro setas. En la figura 6 se presenta una fotografía del ala anterior de la especie en estudio mostrando las setas de la primera vena marcadas de color amarillo y las setas de la segunda vena marcadas de color celeste, apreciando el rasgo característico mencionado anteriormente.

^{Mound & Marullo (1996}) y ^{Palmer et al. (1989}), mencionan que C. signipennis en el Metanotum presenta reticulación débil, setas medias pequeñas y ubicadas detrás del margen anterior. En la figura 7 se pueden observar las setas medias (marcadas de color rojo) ubicadas en el Pronotum además de apreciar las Sensilas campaniformes (señaladas de color azul) debajo de las setas medias.

^{Goldarazena (1996}) informa que las hembras adultas de Thripinae generalmente no presentan áreas glandulares en los esternitos a diferencia de los machos, en los que son muy comunes. Además, en el caso de las hembras de C. signipennis presentan áreas glandulares pequeñas y trans-versales en el esternito III. ^{Mound & Marullo (1996}) mencionan que los machos de C. signipennis presentan áreas glandulares en los tergitos III a VII y que tanto los machos como las hembras no presentan setas discales en el esternito II. En la Figura 8 se aprecia la característica del esternito II y III en hembra de la especie en estudio, se observa el esternito II sin setas discales y área glandular en el esternito III de la hembra, de forma similar informa ^{Sakimura (1975}). En la Figura 9 se puede observar la zona de los esternitos II a VII de un macho de la especie en estudio; se observa presencia de las áreas glandulares en los esternitos III a VII del macho de la especie en estudio tal como lo reporta la literatura para C. signipennis.

^{Goldarazena (1996}) reporta que las especies del género Chaetanaphothrips sp. presenta un área de escultura muy característica que se prolonga anteromedialmente a cada espiráculo en el tergito VIII, también ^{Valladolid et al. (2020}) observaron esta característica particular en Chaetanaphothrips signipennis. En otros thrípidos esta área no se observa en esta posición. ^{Palmer et al. (1989}) menciona además que en el tergito VIII el peine posteromarginal está representado por solo unas microtrichias o microvellosidades laterales, a esta estructura se le conoce como peine postero-marginal incompleto. En la Fgura 10 se observa las características antes mencionadas.

Una característica interesante que reportan ^{Palmer et al. (1989}) es que las hembras de la familia Thripidae tienen ovipositor aserrado dirigido hacia abajo, tal como se visualiza en la figura 11A de la especie en estudio. ^{Mound & Marullo (1996}), informan que C. signipennis presenta un par de setas gruesas en forma de espinas en el tergito IX y ubicadas detrás de estas estructuras presenta algunos tubérculos pequeños, estas estructuras están presentes en la especie en estudio como observamos en la Figura 11B.

La especie en estudio se encontró haciendo daño en la racima y en el pseudotallo, de la misma manera reporta ^{Orellana (2007}) “[en] Chaetanaphothrips orchidii […] el daño es más evidente en la fruta, aunque en el caso de Chaetanaphothrips signipennis por alimentarse también en pseudotallo de hijos de 1 a 1.5 m de altura, provocan unas vetas rojizas típicas ovaladas (Figura 2B), que se van oscureciendo hasta convertirse en manchas rojizas típicas” (Figura 2C). En vista de que la especie C. orchidii no causa daño en pseudotallo, el perjuicio encontrado en esta parte de la planta es un dato que nos acerca más a la confirmación de la identificación de la especie en estudio (^{Hara et al., 2002}); ^{Iesa (2021}) también reportó este daño característico para banano ocasionado por Chaetanaphothrips signipennis. Hara et al. (2002), a través de un estudio de biología de la especie C. orchidii, reportaron que no se observaron machos de esta especie, dado que se reproducen partenogenéticamente, tal como informa Orellana (2007). Teniendo en cuenta esto, la especie que encontramos en campo se reproduce sexualmente, como reportan ^{Bisane et al. (2018}) y como se puede apreciar en las figuras 2A, 3A, 3B, 11A y 11B, dato que nos ayuda a descartar a la especie C. orchidii como propuesta para la especie en estudio (Hara et al., 2002).

C. signipennis (Bagnall) llega a la inflorescencia por el raquis hasta alcanzar la bellota por la abertura que se forma cuando empieza a abrir (Arias et al., 2020), es aquí donde causa el daño entre los dedos de la racima (Figura 2D); provocado por la oviposición de las hembras de los especímenes adultos y la alimentación de las ninfas, después de emerger de sus huevos, raspando la epidermis de los frutos que se tornan de color rojiza debido a la oxidación del látex que emerge de las heridas, afectando la calidad de la fruta (^{Barreto et al., 2021}; ^{García-Rodríguez et al., 2014}; ^{Reyes et al., 2020}; 2021a ), la cual es rechazada durante el proceso de selección del clúster para la exportación (^{Bisane et al., 2018}). Cuando la fruta de banano afectada madura la mancha se extiende reduciendo su calidad. Por lo anterior se entiende que son las ninfas las que producen mayormente el daño, lo cual coincide con lo señalado por Bisane et al. (2018). Cuando las frutas son atacadas, el valor comercial se reduce, aunque la calidad de fruta no es afectada; sin embargo, los frutos dañados no sirven para la exportación (Bisane et al., 2018).

Durante el estudio de C. signnipenis en campo se observó que prefieren alojarse en el falso tallo de hijuelos, área de inserción de las hojas de la planta y en el tercio superior del pseudotallo. Esta especie se oculta a la presencia de luz, en las capas internas del pseudotallo, debido a su naturaleza lucífuga (^{Paredes, 2021}).

Esta especie es cosmopolita geográficamente, debido a su gran capacidad para adaptarse a diversas zonas, ecosistemas y climas. Debido a esto su distribución es amplia y fue reportado en un gran número de países como: Australia, Brasil, China, Costa Rica, Fiji, Guatemala, Honduras, India, Indonesia, Jamaica, Malasia, México, Panamá, República Dominicana, Taiwán, Trinidad, Tobago, Sri Lanka y Surinam. En los EE. UU de Norteamérica también están presentes en Florida y Hawái; en Perú y Ecuador (^{Hara, 2002}; ^{Denmark & Osborne, 1985}).